Пупочная ранка сколько заживает: Клиника Genesis Dnepr

Содержание

Когда заживает пупок у новорожденного: что делать при проблемах | mamaclub

У всех новорожденных после их появления на свет остается пупочная ранка — место, в котором плацента матери соединялась с кровотоком вынашиваемого ребенка.

Сразу после извлечения малыша из утробы пуповина перекрывается специальным зажимом и перерезается. Течение крови через пупочные сосуды (одну вену и две артерии) прекращается. В результате остается небольшой участок пуповины примерно в 2 см, который в роддоме регулярно обрабатывают антисептическими растворами (перекисью водорода и «марганцовкой»).

С каждым днем остаток становится все суше, мумифицируется. Но бывает так, что пупок у новорожденного не заживает слишком долго, что настораживает родителей. Сколько по времени он должен заживать, какие причины задерживают его высыхание и как избежать этого неприятного явления?

Видео дня

Сроки

Чтобы выявить проблему и не переживать без повода, родителям полезно знать, сколько заживает пупок у новорожденного, согласно норме.

Сроки могут отличаться от обычных показателей на 1–3 дня, согласно индивидуальным особенностям маленького организма, но не более того. Заживление пупочной ранки у малышей происходит этапами.

С момента рождения и на протяжении последующих 3–5 дней пуповина у новорожденного представляет собой узелок.

С 3 по 5 день после рождения пуповина окончательно засыхает, самостоятельно отвалившись.

В 1–3 недели жизни пупок у малыша будет заживать, как обычная, хоть и достаточно глубокая рана. Она даже может слегка кровоточить поначалу, что очень пугает молодых родителей. Если кровотечение небольшое, паниковать не стоит.

На 3–4 недели жизни младенца пупочная ранка заживает полностью.

Обычно в роддоме молодую маму предупреждают, когда заживает пупок у новорожденных: происходит это к концу первого месяца жизни малыша. Если данный срок затянулся, обязательно нужно вызвать врача, который поможет выяснить причины данного явления и устранить их, а затем назначит лечение.

Причины

Причин, почему долго не заживает пупок у новорожденного, может быть несколько. Некоторые из них легко исправляются заботой и усилиями самих родителей, а вот какие-то можно будет устранить только с помощью врача.

Большой пупок

У каждого малыша, в зависимости от индивидуальных особенностей тела и состояния плаценты (если она была толстой) размер пупка может отличаться. Если он достаточно большого диаметра, он будет заживать дольше, чем у остальных деток.

Если это истинная причина того, что плохо заживает пупок, ничего страшного нет. Он обязательно присохнет, но происходить это будет медленнее, потому что ранка сама по себе крупная.

Пупочная грыжа

Если пупок у малыша не только не заживает, но еще и выпячивается, — это опасный признак пупочной грыжи. В этом случае ребенка как можно быстрее нужно показать врачу.

Плохой уход за ранкой

Все родители разные: кто-то ревностно сдувает с новорожденного пылинки, кто-то не особо заботится о гигиене. Одинаково плохи оба варианта. В первом случае мама слишком тщательно вычищает ранку, тем самым снова и снова повреждая тонкую кожицу.

Во втором случае может попасть грязь или какое-то инородное тело. В любом случае ранка может закровоточить, и о заживлении и речи быть не может. Нужно обязательно обратиться к врачу за консультацией. Возможно, ему придется извлекать инородное тело из пупочной ранки у новорожденного, так как в домашних условиях такие манипуляции проводить категорически запрещается.

Ослабленный иммунитет

Малыши могут родиться слишком слабенькими, когда неокрепший иммунитет подвержен различным инфекциям и микробам. Для такого организма очень сложно самостоятельно справиться с заживлением такой серьезной раны, как пупочная. Если причиной того, что у ребенка слишком долго не заживает пупок (в этом случае он может кровоточить), является слабый иммунитет, без врачебного вмешательства и медикаментозных препаратов здесь не обойтись.

Нагноение

Если в ранку попала инфекция после загрязнения, в ней может начаться сильное нагноение, которое обычно сопровождается дурным запахом и непонятными выделениями.

Засыхание при этом замедляется, пупок долго остается мокрым. В этом случае нужно как можно быстрее обратиться к врачу.

Причин этого явления может быть много. К концу первого месяца жизни малыша родители начинают переживать, что делать, если у новорожденного не заживает пупок, чем они могут помочь своему крохе. Если заживление ранки затягивается более, чем на месяц, необходимо обратиться в больницу и не предпринимать никаких самостоятельных действий. Это может навредить здоровью малыша и усугубить его состояние. Только врач может определить истинную причину этого неприятного и болезненного явления и назначить соответствующее лечение. При этом нужно помнить, что гораздо проще предотвратить болезнь, чем лечить ее. Это касается и заживления пупочной ранки у новорожденных.

Профилактика

Чтобы пупок у грудничка зажил как можно быстрее, родители изначально должны обеспечить правильный уход за ранкой. Это облегчит жизнь малышу и не допустит долгого и болезненного заживления пупка.

Первые 7–10 дней пупочную ранку нужно обрабатывать «зеленкой». Делать это рекомендуется раз в день после купания перед сном.

Когда на пупочной ранке образуется корочка, ее лучше не снимать: риск повреждения кожицы очень велик. Пусть лучше она отпадет самостоятельно.

В период заживления пупка малышей лучше купать в отдельной, детской ванночке. Воду для этих процедур рекомендуется кипятить, а затем остужать до 36-37°С.

Если у новорожденного очень долго (больше месяца после его появления на свет) не заживает пупочная ранка, это является сигналом к тому, что что-то пошло не так, и нужно обязательно и как можно скорее обратиться за помощью к врачу. Любые самостоятельные действия могут только ухудшить состояние ребенка в целом и ранки — в частности.

Пупочная ранка у новорожденных

Любая женщина знает, что в период внутриутробного развития ребенок соединен со своей мамой пуповиной. В этом «канатике» проходят вена и артерии, которые транспортируют к плоду необходимые для жизни вещества и выводят ненужные.

После рождения ребеночка пуповину отсекают — с этого момента он становится совершенно самостоятельным организмом.

Для остановки кровотечения на пуповинный остаток крохи надевается специальная скоба (в старину с этой целью просто перевязывали пупок). По истечении нескольких дней скоба вместе с пуповинным остатком отпадает — и начинает формироваться пупок новорожденного. Но чтобы этот процесс проходил благополучно и без осложнений, за пупочной ранкой младенца следует регулярно ухаживать.

Как ухаживать за пупочной ранкой

Уход за пупочной ранкой новорожденного — одна из самых важных и обязательных процедур, которую следует повторять ежедневно. Обычно это производится после купания малыша.

К слову, о купании: очень часто родители задаются вопросом, можно ли купать новорожденного, пока не зажила пупочная ранка? Педиатры говорят, что попадание жидкости в ранку очень нежелательно, но купать ребенка, безусловно, можно, только не в общей, а в отдельной, собственной ванночке малыша. Для этого следует использовать кипяченую воду, в нее можно добавить немного марганцовки до бледно-розового, еле заметного цвета воды.

После купания из пупочной ранки обязательно нужно удалить остатки влаги. Для этого достаточно аккуратно приложить к пупку ватный диск или кусочек стерильного бинта и вымочить воду. Пупок новорожденного ни в коем случае нельзя тереть, выковыривать из него грязь и в целом старайтесь поменьше в него лазить и трогать.

Чтобы пупочная ранка заживала быстрее и лучше, она должна постоянно «дышать», то есть ничего не должно препятствовать свободному доступу к ней воздуха. В связи с этим подгузники следует подворачивать в области пупка или ножницами вырезать здесь отверстие, чтобы пупок всегда оставался открытым (точнее, до того периода, пока полностью не заживет). Поверх него может располагаться только чистая проутюженная распашонка или бодик из натуральной ткани.

Любая болезнетворная бактерия, обитающая в воздухе или на руках родителя, способна проникнуть в пупочную ранку и привести к ее инфицированию. А потому уход за пупком новорожденного всегда следует производить очень чистыми руками.

Чем лучше обрабатывать пупочную ранку?

Наверное, в большинстве заграничных роддомов родильницам не дают никаких рекомендаций относительно обработки пупочной ранки новорожденного либо советуют ничем не обрабатывать ее. В российских родильных домах тоже уже встречаются подобные принципы, но все же чаще медсестры по старинке рекомендуют обрабатывать ранку по прибытии домой спиртовым раствором.

В качестве спиртового раствора акушерские или патронажные медсестры советуют каждый раз что-то другое. Чаще всего рекомендуют применять раствор бриллиантового зеленого (зеленку) или 5%-ный раствор перманганата калия (марганцовку). Можно услышать советы об использовании спирта, настоек календулы, хлорофиллипта, йода и т.п. Что же выбрать?

А выбрать непросто. Потому как, с одной стороны, еще студентам-медикам, а затем и практикующим врачам рассказывают, что зеленка вызывает мокнутие, что в случае с пупочной ранкой совершенно недопустимо. С другой стороны, многие педиатры и родители привыкли назначать и использовать для обработки пупка именно ее, и практика показывает, что нередко зеленка хорошо помогает.

Тем не менее, большинство детских врачей сходится во мнении, что лучше все же для этих целей применять марганцовку: она хорошо подсушивает, чего и необходимо добиться, обрабатывая пупочную ранку, да и непереносимость зеленки встречается намного чаще. Только необходимо правильно приготовить раствор перманганата калия — до полного растворения кристалликов, процедить его перед применением и каждый день готовить свежий.

Итак, Вы искупали кроху и промокнули остатки влаги в пупке. Если пупочная ранка кровит, то теперь нужно обработать ее перекисью. Для этого аккуратно сдвиньте кожу в складку, чтобы пупочек оказался внутри, и капните в него каплю либо промокните перекисью ватный диск и приложите к пупку. Затем сухим диском аккуратно, но тщательно уберите вспенившееся содержимое, после чего обработайте ранку спиртовым раствором или марганцем. Лучше поступить так же — капнуть каплю вовнутрь пупка, подождать, пока подсохнет, и убрать остатки жидкости.

Очень часто педиатры говорят, что злоупотребление перекисью ухудшает заживление пупка, а потому не используйте ее слишком часто.

Пупочная ранка мокнет

Признаком хорошего заживления пупочной ранки является ее пребывание в сухом состоянии. Если Вы замечаете выделение жидкости из пупочной ранки новорожденного, она мокнет, все время мокрая и сочится, то это означает, что процесс заживления не происходит.

Проанализируйте, что именно Вы, возможно, делаете не так. Может, пупок «не дышит» или после купания в пупочном дне остается вода. Возможно, ребеночку не подходит выбранный Вами раствор для обработки пупочной ранки: смените зеленку на марганцовку или попробуйте спиртовую настойку календулы. Очень многим быстро и эффективно помогает порошок ксероформа, но о его применении следует посоветоваться с врачом.

Если вы видите, что пупочная ранка долго не заживает, то непременно покажите пупок педиатру. В исключительно редких случаях пупок может мокнуть и кровить по другим причинам, требующим хирургического лечения. Кроме того, бывают случаи, когда сосудистая и соединительная ткань внутри пупка начинает разрастаться, образуя гранулемы. Такие осложнения лечат прижиганиями ляписа — специального карандаша с пропитанным серебром стержнем.

Долго не заживает пупочная ранка у новорожденного

Вплоть до полного заживления пупок остается открытой раной и свободным входом для любых инфекций. Здесь тепло и влажно, а потому болезнетворные микробы чувствуют себя очень хорошо и довольно быстро начинают размножаться. Воспалительный процесс в пупке называется омфалитом, и в зависимости от его степени тяжести и особенностей течения врачи выделяют несколько видов омфалита.

Обычно воспаленный пупок отекает, становится припухшим, красноватым, чего может быть не видно под красящими растворами (зеленкой, марганцовкой) — вот почему врачи предпочитают «прозрачную» обработку пупочной ранки.

Кожа вокруг воспаленного пупка может быть горячей, изнутри ощущается гнилостный запах или сочится жидкость, выделяется гной.  Если Вы замечаете нечто подобное, то необходимо вызывать педиатра на дом или сходить на участок.

Почему кровит пупочная ранка

В отличие от гноя, кровь из пупка новорожденного выделяется не только при воспалении. Очень часто случается, что уже после кажущегося заживления спустя несколько дней пупок опять начинает кровить… В этом нет ничего страшного, если такие случаи носят эпизодический характер и не переходят в постоянное мокнутие и кровление.

Чаще всего пупочная ранка начинает кровить при напряжении малышом мышц брюшного пресса — после натуживания во время плача или дефекации. Когда пупок полностью заживет, подтекания крови прекратятся. Но если оно повторяется регулярно, то нужно сказать об этом врачу.

Как долго обрабатывать пупочную ранку

Следует сказать, что далеко не все родители обрабатывают пупочную ранку, и даже в таких случаях заживление нередко происходит быстро и без проблем. Но если Вы начали обрабатывать пупок, то это нужно делать регулярно, хотя и не злоупотребляя: одного раза в день будет достаточно, причем перекись необязательно применять каждый раз.

Пупочек считается зажившим, если из него не выделяется никакая жидкость и в течение длительного времени он остается сухим, а кожа вокруг пупка не отличается от окружающих ее тканей — ровная, гладкая, негорячая, невоспаленная. Косвенным признаком этого может быть отсутствие вспенивания после закапывания в пупок перекиси водорода.

Есть мнение, что обработку пупка можно прекратить, если он остается полностью сухим более двух дней, но ребенок на этот момент должен имеет не менее 2 недель.

Через сколько дней заживает пупочная ранка

В целом пупок у всех заживает по-разному: и по длительности, и по сопутствующим признакам. Есть родители, которые не сталкивались ни с какими проблемами, связанными с пупочной ранкой. А другие стараются, прилежно выполняют все рекомендации по обработке и уходу — а пупочная ранка упорно не заживает.

Главное, не пропустить момента, когда детский пупок необходимо показать педиатру:

  • кожа вокруг пупка красная, воспаленная, горячая;
  • пупочная ранка кровит более 10 дней подряд;
  • изнутри выделяется гной, сукровица;
  • появление гнилостного запаха из пупка;
  • пупок мокнет дольше трех недель.

Во всех остальных случаях, если наблюдается положительная динамика или хотя бы нет ухудшения, можно не паниковать. Пупочная ранка у всех деток заживает в разные сроки: некоторые счастливчики спустя неделю после рождения уже не имеют никаких забот с пупком, другие продолжают обработку до месяца и даже больше. Но консультация с педиатром лишней не будет в любом случае.

Специально для nashidetki. net- Елена Семенова

Как обрабатывать пупок новорождённого

Родителей довольно часто волнуют вопросы, связанные с пупком своего любимого малыша, они зачастую не знают, как правильно ухаживать и как обрабатывать пупок новорождённого.

Ещё не так давно, пуповину новорождённым детям перевязывали и отсекали. В настоящее время от этого отошли — пуповину пережимают специальной скобкой и отсекают. Скобка остаётся с ребёнком до тех пор, пока пуповина не отвалится сама вместе с ней, т.е. самостоятельно снимать её не нужно. Считается, что таким образом гораздо лучше пережимаются кровеносные сосуды пуповины, через которые осуществлялась циркуляция крови между мамой и ребёнком, и за счёт лучшего пережатия оставшаяся часть пуповины быстрее мумифицируется и отпадает сама собой вместе со скребкой.

Сколько заживает пупок

Если рассматривать сколько заживает пупок новорождённых можно отметить, что полностью это происходит через 3-4 недели.

С рождения до момента мумификации оставшегося кусочка пуповины проходит 4-5 дней, далее недели 2-3 заживает как обычная ранка, хоть и достаточно глубокая.

Пупочная ранка требует внимательный бережный уход с соблюдением ряда правил. Не стоит ими пренебрегать, так как статистика осложнений пупочной ранки оставляет желать лучшего, так легко в неё может проникнуть инфекционный агент.

Так же пересмотрели и запрет на купание до времени заживления пупка новорождённого, то есть купать малышей теперь разрешается с первых дней жизни, единственное, желательно это делать в кипячёной воде, остуженной до 37 градусов.

Правила обработки пупка

Обработка пупка у новорождённых – важнейшие правила ухода:

  • Соблюдайте правила асептики и антисептики! Тщательно мойте руки перед каждой процедурой ухода за пупком ребёнка, так как вероятность попадания инфекции очень велика;
  • Действует правило «сухой, открытый уход за пупком», правильно, если после каждой обработки он остаётся чистым и сухим, так пуповина быстрее высохнет и отпадёт. Не закрывайте пупочек ни повязками, ни памперсом, пелёнка и одежда должны быть чистыми и стерильными. Если всё же вам хочется одеть памперс поверх пупка, можно сделать в нём специальную дырочку для него, либо подкладывать тоненькую сухую стерильную салфетку на пупочек;
  • Обработка пупка у новорождённых проводится 1 раз в день. Возьмите этиловый спирт 70 градусов и точечным движением промокните пупок. Далее обрабатывайте антисептическими растворами 3% раствором перекиси водорода с последующим смазыванием 5% раствора калия перманганата, можно заменить на 1% раствор бриллиантовый зелёный. Пользуйтесь ватными турундочками или ватными палочками. После обработки – обязательна воздушная ванна. Примерно спустя неделю от спирта можно отказаться, а растворы для обработки оставить. На 3-4 неделе, если пупок уже полностью сухой можно отказаться и от перекиси водорода;
  • Как клипса отвалится может остаться небольшая ранка. Обработка и уход за пупочной ранкой такие же, как описано выше. Добиваемся чтобы ранка сохла и не размокала.

Уход за мокнущей пупочной ранкой

Если пупочная ранка постоянно мокнет и никак не хочет высыхать, уход за пупочной ранкой следующий:

  • Раз мокнет — нужно подсушить (вспомните главное правило ухода «сухой, открытый уход за пупком») — увеличьте частоту обработки антисептическими растворами до 2-3 раз в день, они являются главными обеззараживающими и подсушивающими компонентами в уходе за пупочной ранкой;
  • Чаще проводите воздушные ванны;
  • Водные процедуры исключать не нужно, вода тоже помогает подсушиванию, можно сократить время купания в большой ванне до 5 минут, чтобы ранка излишне не размокала;
  • Если из пупочной ранки появляется отделяемое грязно-бурого или желтоватого цвета, продолжайте обрабатывать также, на фоне обработки через 3-5 дней образуется корочка, которую не нужно отковыривать, под ней ранка быстрее и лучше эпителизируется, а корочка отпадёт сама;
  • В случае же, если выделения продолжаются, пупок мокнет, не останавливайте уход и обработку и обратитесь к доктору. Ничего не выдавливайте и не отковыривайте, вы рискуете здоровьем малыша! Открытая рана является прямыми входными воротами для бактериальных микроорганизмов в маленький организм.

Если ранка мокнет разобрались, а что делать если кровоточит пупок у новорождённого?

Уход за кровоточащей пупочной ранкой

Если это не сильное кровотечение, а капельки от оторвавшейся корочки, нужно просто хорошо обработать место кровоточивости отдельным кусочком стерильной ваты с 3% раствором перекиси водорода и далее смазать 5% раствором калия перманганата либо 1% раствор бриллиантовый зелёный. Лучше всего конечно проконсультироваться с педиатром, который сможет определить причину кровоточивости и правильно ли выполняется уход за пупком новорождённого.

Пупочная грыжа

В районе пупка прощупывается пустое место или видна выпуклость, тогда возможно, речь идёт о пупочной грыже. Обратитесь к врачу, в зависимости от выраженности процесса он определит дальнейшую тактику лечения и как правильно проводить уход за ней. Чаще пупочная грыжа проходит без специфического лечения до возраста 1 года.

Родителям рекомендуется выполнять дома следующие профилактические мероприятия для предотвращения образования пупочной грыжи у новорождённого ребёнка – почаще выкладывайте малыша на животик, выполняйте гимнастическую зарядку соответствующую возрасту малыша для укрепления мышц передней брюшной стенки, занимайтесь плаванием в ванной на животе с поддержкой родителя.

Малыши не очень любят процедуры по уходу за собой, поэтому постарайтесь делать всё чётко и достаточно быстро, чтобы ребёнок не успел раскапризничаться. Можно рассказывать ему в этот момент забавную потешку или просто ласково с ним поговорить. Это они точно любят.

Вопросы, касающиеся как обрабатывать пупок новорождённого в тех или иных случаях, часто вводят родителей в ступор. И не зря. Стоит помнить, что самолечение, как правило, ни к чему хорошему не приводит, поэтому не поленитесь проконсультироваться со специалистом, даже если вы нашли интересующую вас информацию в сторонних источниках.

Здоровья вам и вашим малышам!

Зайцева Валентина,
Врач, лечебное дело

Пластика пупочной грыжи — Восстановление

Обычно можно вернуться домой в тот же день, когда сделали пластику пупочной грыжи.

Болезненность и дискомфорт сразу после операции — это нормально. Местный анестетик, который вызывает онемение области, будет введен до окончания операции, чтобы уменьшить боль. Также будут предоставлены обезболивающие.

Ваш ребенок может быть сонным или много плакать и требовать дополнительного внимания после операции. Это нормально и пройдет.

Большинство взрослых и детей могут идти домой через несколько часов после операции, когда они поели и попили.

Ночевка в больнице обычно рекомендуется только людям с другими проблемами со здоровьем или людям, у которых регулярная рвота и которые не могут удержать пищу и питье.

Последующий прием

Перед выпиской из больницы вам скажут, нужно ли вам или вашему ребенку пройти повторный прием.

Если необходима запись, вы получите письмо по почте с подтверждением деталей даты и времени.

Дома

У вас могут быть синяки и болезненность вокруг раны во время вашего выздоровления дома. Это нормально и обычно проходит в течение недели. Однако отек может не спадать в течение нескольких недель.

Персонал больницы посоветует вам принимать обезболивающие, чтобы уменьшить любой дискомфорт. Вы можете дать ребенку обезболивающие, такие как парацетамол и ибупрофен.Детям до 16 лет нельзя давать аспирин.

Ношение свободной одежды может помочь уменьшить любой дискомфорт, который испытывает ваш ребенок, но он должен иметь возможность носить брюки или юбку, как обычно.

Перед выпиской из больницы убедитесь, что вы следуете инструкциям по гигиене, уходу за раной и купанию.

Натуживание в туалете из-за запора может вызвать боль вокруг раны. Употребление большого количества жидкости и употребление в пищу большого количества овощей, фруктов и продуктов с высоким содержанием клетчатки, таких как коричневый рис, хлеб из непросеянной муки и макароны, может помочь снизить вероятность этого.

Деятельность

Ваша хирургическая бригада сможет дать вам хорошее представление о том, сколько времени потребуется, чтобы восстановиться после операции.

Если операция проводилась под общей анестезией, ваша координация и мышление могут быть нарушены на короткое время. Поэтому взрослые должны избегать употребления алкоголя, работы с механизмами или подписания юридических документов в течение как минимум 48 часов после процедуры.

Обычная деятельность может постепенно возобновляться с течением времени до тех пор, пока она не станет выполняться без ощущения боли.Большинство людей могут заниматься легкой деятельностью через 1 или 2 недели.

Легкие физические упражнения, такие как ходьба, могут помочь процессу заживления. Следует избегать подъема тяжестей и напряженной деятельности в течение примерно 4-6 недель.

Работа и школа

Лучше всего не пускать ребенка в школу примерно на неделю, чтобы дать ему время оправиться от анестезии и операции. Они должны быть освобождены от занятий спортом и игр как минимум на 2 недели, когда они вернутся в школу. Следует избегать контактных видов спорта в течение 6–8 недель.

Взрослые, перенесшие операцию, должны иметь возможность вернуться к работе через неделю или две, хотя вам может потребоваться больше времени, если ваша работа связана с физическим трудом.

Вождение

Обычно рекомендуется не садиться за руль до тех пор, пока вы не сможете совершить аварийную остановку, не чувствуя боли или дискомфорта – вы можете потренироваться, не заводя машину.

Обычно это происходит через 1 или 2 недели после операции, прежде чем вы достигнете этого момента.

Обычно рекомендуется обратиться в свою страховую компанию, прежде чем снова начать водить машину.

Когда обращаться за медицинской помощью

Позвоните своему хирургу или терапевту, если после операции по поводу пупочной грыжи разовьется любой из следующих симптомов:

  • персистирующая лихорадка выше 38°С
  • кровотечение
  • усиление отека или боли в животе
  • боль, которую не снимают обезболивающие
  • постоянная тошнота или рвота
  • озноб
  • постоянный кашель или одышка
  • усиление покраснения вокруг разрезов
  • затрудненное мочеиспускание

Последняя проверка страницы: 07 августа 2018 г.
Следующая проверка должна быть завершена: 07 августа 2021 г.

Одноцентровое ретроспективное исследование криоконсервированной пуповины для заживления ран у пациентов с хроническими ранами стопы и голеностопного сустава

Цель: Хронические раны являются серьезной проблемой не только в раневых учреждениях, но и в повседневной практике врачей общей практики и специалистов самых разных специальностей. Эти раны в основном представляют собой язвы стопы или нижних конечностей и могут быть результатом комбинации факторов, включая невропатию, сосудистую недостаточность и нарушение заживления ран. В дополнение к значительным затратам на здравоохранение изъязвления оказывают разрушительное воздействие практически на все аспекты повседневной жизни пораженного пациента, такие как сильная боль, нарушение сна, ограничение подвижности и трудоспособности. Цель этого одноцентрового ретроспективного исследования состояла в том, чтобы оценить клиническую эффективность криоконсервированного аллотрансплантата пуповины человека (cUC) в качестве передового метода терапевтического лечения хронических незаживающих ран нижних конечностей.

Материалы и методы: После одобрения Институциональным наблюдательным советом ретроспективно были собраны данные обо всех подходящих пациентах, которые получали лечение тканей cUC в течение 16 месяцев. Всего было проанализировано 57 пациентов с 64 хроническими ранами, получавших лечение с ЯК и лечившихся одним и тем же хирургом в одном центре лечения ран.

Результаты: Средняя исходная площадь раны составила 6,85 см2 ± 16,29 см2. В целом, 51 из 64 ран полностью зажили, в результате чего общая скорость заживления ран составила 79,7%. Для заживших ран среднее время заживления ран составляло 5,53 ± 3,93 недели, и для достижения заживления было использовано в среднем 3,43 ± 2,42 применения cUC.

Заключение: В целом, эти результаты демонстрируют, что cUC может быть эффективным в содействии заживлению хронических язв нижних конечностей.Кроме того, это исследование предполагает, что cUC может быть полезным передовым методом лечения тканей, который может не только улучшить качество жизни пациентов, но и положительно повлиять на рост затрат на здравоохранение, связанных с длительным лечением таких язв. Необходимы дальнейшие исследования, в том числе проспективные рандомизированные контролируемые испытания, чтобы лучше понять эффективность cUC.

границ | Бесклеточный желатиновый материал пуповины человека улучшает заживление ран: потенциальное средство от недостаточного заживления ран

Введение

Рана описывается как нарушение нормальной здоровой анатомической структуры и функциональной целостности кожи (Atiyeh et al., 2002). Процесс заживления ран включает четыре интегрированных и перекрывающихся фазы: гемостаз, воспаление, пролиферацию и ремоделирование или рассасывание тканей (Gosain and DiPietro, 2004). Эти шаги позволяют реформировать и реваскуляризировать кожу, позволяя сформироваться функциональной дерме и эпидермису. Около 1,5 миллиарда человек страдают от кожных заболеваний, вызванных как прогрессирующим старением, так и отсутствием адекватной медицинской помощи (Valacchi et al., 2012). Среди них широко распространены поражения кожи, которые можно разделить на острые и хронические раны (Whitney, 2005). Сообщалось, что острые раны обычно следуют за травмой или воспалением и обычно заживают в течение 6 недель (Valacchi et al., 2012). При определенных обстоятельствах возникают хронические раны, также известные как незаживающие раны, которые не проходят нормальные этапы заживления ран и не заживают в течение 6 недель. др., 2009). Такие раны часто переходят в состояние патологического воспаления вследствие отсроченного, незавершенного или нескоординированного процесса заживления.Лечение хронической раны, определяемой как барьерный дефект, который не зажил в течение 3 месяцев, стало серьезной терапевтической проблемой во всем западном мире, и эта проблема будет только усугубляться с появлением состояний, препятствующих заживлению раны, таких как поскольку диабет, ожирение, сосудистые расстройства растут в дополнение к ожоговым травмам (Nunan et al., 2014).

Основными задачами при лечении ран являются быстрое закрытие раны и получение функционального и эстетически удовлетворительного рубца. Для этого покрытие раны является одним из краеугольных камней лечения ран (Singer and Clark, 1999). Клиницисты могут использовать различные материалы и методы, такие как терапия антибиотиками, хирургическая санация, устройства с отрицательным давлением, раневые повязки, гипербарическая оксигенотерапия, противомикробная терапия, биоинженерные эквиваленты кожи и факторы роста, но они имеют ограниченный успех, что иллюстрирует сложности заживления ран. Кожные трансплантаты из аллогенных или аутологических источников, реконструктивные тканевые лоскуты и искусственные заменители кожи также могут быть полезны при лечении более обширных или хронических ран (Valacchi et al., 2012). Хотя исследования продолжаются, а заменители кожи становятся все более эффективными, заживление ран остается клинической проблемой, особенно у стареющего населения (Jeschke et al., 2015, 2016). Клинические и доклинические исследования с использованием клеточной терапии постепенно внедряются в медицинскую помощь для лечения кожных ран, поскольку они могут восстанавливать/замещать поврежденную ткань здоровой тканью благодаря своей естественной способности продуцировать цитокины и молекулы, необходимые для заживления ран (Marfia и др., 2015; Маркесон и др.., 2015; Николас и др., 2016a,b).

В 1991 г. McElreavey et al. впервые выделили мезенхимальные стромальные клетки из вартоновой желеобразной части пуповины (McElreavey et al., 1991). Wharton’s Jelly является источником перинатальных мезенхимальных стволовых клеток (WJ-MSC) с уникальными свойствами как эмбриональных, так и взрослых стволовых клеток (Pirjali et al., 2013). МСК, полученные из желе Wharton, обладают способностью сохранять фенотипические признаки, кинетику клеточного роста, характер клеточного цикла, in vitro пластичность многолинейной дифференцировки, апоптотический характер, нормальные кариотипоподобные внутренние свойства МСК в долгосрочных культурах in vitro (Sabapathy и другие., 2014). В нескольких исследованиях изучалась клеточная терапия с помощью WJ-MSC, отдельно или в каркасе (Azari et al., 2011; Shohara et al., 2012; Fong et al., 2014; Ribeiro et al., 2014; Sabapathy et al., 2014). Исследования выявили роль WJ-MSCs для различных применений, таких как неврологические расстройства (Shalitin et al., 2003), повреждение почек (Du et al., 2013), повреждение легких (Moodley et al., 2009), печень лечение травм и рака (Sabapathy et al., 2014). Недавно мы сообщили, что кондиционированная среда WJ-MSC с ее секретомом оказывает положительное влияние на заживление ран in vitro (Arno et al., 2014).

Мезенхимальные стволовые клетки в Вартоновом желе находятся в тесном взаимодействии со своим внеклеточным матриксом. Учитывая, что секретом WJ-MSCs усиливает заживление ран 90–110 in vitro 90–111 , мы спросили, оказывает ли нативный внеклеточный матрикс этих клеток, который не обязательно секретируется WJ-MSC, какой-либо эффект на заживление кожи. Желе Уортона само по себе без клеток не исследовалось в отношении заживления ран. Желе Уортона содержит значительное количество компонентов внеклеточного матрикса, состоящих в основном из коллагена, гиалуроновой кислоты и различных сульфатированных протеогликанов.Хорошо известно, что биосинтез компонентов внеклеточного матрикса усиливается несколькими пептидными факторами роста, в основном инсулиноподобным фактором роста (IGF) (Edmondson et al., 2003), фактором роста фибробластов (FGF) (Yu et al., 2003). ) и трансформирующий фактор роста b (TGF-b) (Шалитин и др., 2003). Эти факторы роста могут накапливаться в вартоновом желе для поддержки клеток (например, МСК). Поэтому мы предположили, что бесклеточное желеобразное желе Уортона (AGWJ) улучшает заживление кожных ран. Здесь мы сообщаем о влиянии лечения AGWJ на фибробластные клетки дермы посредством экспериментов in vitro .Затем мы провели эксперименты по заживлению ран на 8-недельных самцах мышей C57/black 6, чтобы установить эффект лечения AGWJ на раны in vivo . Полученные данные подтверждают исследование нового метода лечения заживления ран с использованием AGWJ.

Материалы и методы

Культура клеток

Пластиковая посуда для тканевых культур была приобретена у BD Falcon™ (Бедфорд, Массачусетс, США), а все среды и добавки для тканевых культур были приобретены у Wisent Inc. (Сент-Жан-Батист, QC, Канада), если не указано иное.Среда для культивирования клеток фибробластов представляла собой модифицированную по Дульбекко среду Игла с высоким содержанием глюкозы (DMEM) с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки (FBS) и 1% раствора антибиотика-антимикотика. Первичные фибробласты нормальной кожи человека получали из образцов кожной ткани. Кожу рассекали, чтобы удалить любой подлежащий жир из дермы, разрезали на небольшие кусочки эксплантата от 2 до 4 мм и культивировали в 10-сантиметровых чашках. Когда клетки фибробластов мигрировали из ткани на планшет, кусочки ткани удаляли.Когда фибробласты достигли 70% слияния, примерно в течение 1 недели, их трипсинизировали 0,05% трипсином для подготовки к пересеву. Фибробласты пересевали в 75 см 2 колбы для культур тканей при плотности 5000 клеток/см 2 .

Ацеллюляризация желе Уортона

Стерильные пуповины были получены при кесаревом сечении, проведенном хирургами из отделения гинекологии и акушерства Центра медицинских наук Саннибрук после получения согласия пациенток.Шнуры средней длины 20 см разрезали пополам. Затем 10-сантиметровые половинки шнуров были разрезаны вдоль, чтобы обнажить содержимое желе Уортона. Кусочки пуповины затем промывали, погружая их в 2% раствор антибиотика/антимикотика PBS с последующим погружением их в 1% раствор антибиотика/антимикотика PBS. Затем пуповину полностью вскрывали и стерильным скальпелем соскребали желе с пуповины. Затем желе (приблизительно 5 мл) помещали в коническую пробирку на 50 мл с 20 мл полной среды 1× DMEM и энергично ресуспендировали с помощью пипетки на 5 мл для разделения желе.Затем ресуспендированное желе в среде центрифугировали при 1400 об/мин в течение 10 мин. Клетки и остатки пуповины осаждали. Супернатант с AGWJ собирали и замораживали при -80°C. Осадок клеток отбрасывали (дополнительная фигура 1).

Исследование миграции клеток: анализ соскоба

Нормальные фибробласты кожи человека высевали в шестилуночные планшеты при плотности клеток 20000 клеток/лунку. Когда лунки достигали 100% слияния клеток, делали две царапины кончиком пипетки на 1000 мкл.Затем среду отсасывали и клетки промывали PBS. PBS был аспирационным. Одну лунку немедленно окрашивали кристаллическим фиолетовым в момент времени 0 ч. К клеткам добавляли среду для обработки AGWJ в DMEM или полную контрольную среду DMEM. Через 24 ч клетки окрашивали кристаллическим фиолетовым. Изображения были получены на микроскопе (Zeiss) с 4-кратным увеличением. На каждую царапину было сделано восемь изображений. Количественную оценку проводили с использованием программного обеспечения ImageJ (Национальные институты здравоохранения, Бетесда, Мэриленд, США).Клетки в зоне царапин считали клетками в зоне царапин.

In Vivo Модель для заживления ран

Восемь C57/black 6 (возраст 8 недель, самец, масса тела от 25 до 30 г) были получены из лаборатории Джексона в соответствии с рекомендациями Научно-исследовательского института Саннибрук и Комитета Саннибрук по политике и благополучию животных Университета Торонто. Процедуры для животных были рассмотрены и одобрены Исследовательским институтом Саннибрук и Центром медицинских наук Саннибрук при комитете по уходу и использованию животных Университета Торонто.Животных анестезировали, и кожные волосы на спине удаляли электробритвой под наркозом, как указано в Протоколе для животных. С каждой стороны от срединной линии создавали 4 полнослойных кожных раны диаметром 6 мм. Животные были случайным образом разделены на две группы: лечение (AGWJ и Matrigel; высококонцентрированный матрикс Corning Matrigel, продукт № 354262 Corning, NY, USA) и контроль (полная среда DMEM и Matrigel). Для 5-дневного исследования: 3 мыши получали контрольное лечение ран и 3 мыши получали лечение AGWJ.Для 7-дневного исследования: 6 мышей получали контрольное лечение и 7 мышей получали лечение AGWJ. В каждую рану местно вводили 100 мкл лечения AGWJ или контрольной DMEM в смеси Matrigel. День ранения считали 0-м днем. Для 7-дневного исследования на 2-й и 4-й дни раны перевязывали. На 6-й день, за 24 часа до увольнения мышей, животным внутрибрюшинно вводили бромдезоксиуридин (BrdU) (Calbiochem, Сан-Диего, Калифорния, США). На 5-й день раны перевязывали на 2-й день, инъецировали BrdU на 4-й день, а мышей умерщвляли на 5-й день.

Этические правила исследований на животных

Эксперименты на животных были рассмотрены и одобрены и проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами, установленными Исследовательским институтом Саннибрук и Комитетом по политике и благополучию животных Саннибрук Health Sciences при Университете Торонто, Онтарио, Канада. Все процедуры с использованием животных были одобрены комитетом по уходу за животными Sunnybrook, одобрение № 15-503 (M-1), выданное 20 ноября 2015 г. под эгидой Канадского совета по уходу за животными.

Пуповины человека были получены в результате кесарева сечения, проведенного хирургами из отделения гинекологии и акушерства Центра медицинских наук Саннибрук Университета Торонто, Торонто, Онтарио, Канада. Все субъекты дали письменное информированное согласие в соответствии с Хельсинкской декларацией принципов. Протокол был одобрен Академической сетью медицинских наук Торонто (TAHSN) и научно-исследовательским институтом Саннибрук при Университете Торонто и Советом по обзору институциональной этики Центра медицинских наук Саннибрук (номер REB: 017-2011, действителен до 1 марта 2017 г.), а после получения пациент подписал информированное согласие.

Анализ ран

На 5-й и 7-й день мышей забивали. Затем раны иссекают с помощью скальпеля и хирургических ножниц. 3 из 4 ран помещали в гистологические кассеты и фиксировали в 10% забуференном формалине на 24 ч при 4°, затем переводили в 70% раствор этанола и затем заливали в парафин. Образцы разрезали на срезы толщиной 5 мкм. Образцы ткани разрезали по центру или срединной линии раны, обеспечивая поперечное сечение через центр раны. Затем обе половины раны помещали на предметные стекла для анализа.Раны также включали нормальную неповрежденную кожу по обе стороны от раны. Четвертая рана была заморожена сразу после иссечения для дальнейшего анализа. Для анализа ран в поле высокой мощности (HPF) грануляционная ткань была выбрана из центра раны, которая представляла собой зажившую область как в контрольной группе, так и в обработанной AGWJ ране.

Трихромный краситель

Реагенты Trichrome

были получены от EMS (Хатфилд, Пенсильвания, США), если не указано иное. Предметные стекла, залитые парафином, нагревали в течение 30 мин при 60°С.Затем предметные стекла депарафинизировали цитрозолом с последующей регидратацией через 100% × 2, 95%, 70% и промывали дистиллированной водой. Предметные стекла помещали в раствор Буэна (26367-01; EMS, Хэтфилд, Пенсильвания, США) на ночь при комнатной температуре и промывали под проточной водопроводной водой в течение 10 минут. Окрашивание гематоксилином (HHS16; Sigma, Сент-Луис, Миссури, США) и раствор фуксина скарлатиновой кислоты Бибриха наносили последовательно на 10 мин. Промывки проводили после каждого добавления красителя. Препараты дифференцировали в фосфорно-вольфрамовой кислоте в течение 15 мин и переносили в анилиновый синий на 5 мин.Затем предметные стекла ополаскивали и дифференцировали в 1% уксусной кислоте в течение 2 минут, затем промывали в дистиллированной воде. Затем предметные стекла обезвоживали 95% этанолом и абсолютным этанолом с последующей очисткой в ​​цитрозоле. Предметные стекла монтировали с помощью жидкой монтажной среды SHUR/Mount на основе ксилола (Triangle Biomedical Sciences, Дарем, Северная Каролина, США). Изображения были получены с использованием светового микроскопа Zeiss Axiovert 200 при 5-кратном, 10-кратном, 20-кратном и 40-кратном увеличении. Количественную оценку проводили с использованием объединенных изображений для измерения всей длины раны.

Иммуногистохимия

Предметные стекла ткани кожи, залитые парафином, депарафинизировали нагреванием в течение 30 мин при 60°. Затем предметные стекла помещали в цитрозол (2×), 100% этанол (2×), 95% этанол, 70% этанол на 3 минуты каждый, а затем в воду. Затем выполняли извлечение антигена с использованием средства для снятия маскировки антигена (1×; Biocare Medical, Concord, CA, USA), которое добавляли к предметным стеклам в предварительно нагретой камере для снятия маскировки на 4 мин при 110°C. Для окрашивания BrdU образцы денатурировали 1,5 N HCl в течение 30 минут при 37°C и нейтрализовали 0.1 М борат дважды забуферен в течение 5 мин. Образцы блокировали 3% H 2 O 2 в течение 10 мин, а затем промывали промывочным буфером (0,05 М Трис-HCl, 0,15 М NaCl, 0,05% Tween 20 в деионизированной воде). Первичное антитело (мышиное моноклональное анти-BrdU, 1:200; Cell Signaling, Беверли, Массачусетс, США) разводили в PBS и инкубировали при комнатной температуре в течение 1 часа. Для анализа α-актина гладких мышц (α-SMA) другой срез исследовали с помощью αSMA (мышиное моноклональное антитело против αSMA, 1:200; клон 1A4; ebioscience, Сандиего, Калифорния, США). Первичное антитело, разведенное в PBS, инкубировали при комнатной температуре в течение 1 час.Затем предметные стекла инкубировали в течение 15 минут с мышиным зондом MACh4 (Biocare Medical), а затем с кроличьим или мышиным полимером пероксидазы хрена MACh4 с промежуточными промывками. Набор бетазоид-диаминобензидинового хромогена (Biocare Medical) смешивали и добавляли на 5 минут или до появления заметного коричневого пятна. Реакцию останавливали проточной водой. Окрашивание ядер проводили гематоксилином в течение 30 с с последующей дифференцировкой с трехкратным погружением в 1,5%-ный кислый спирт и подсиниванием в 0,1%-ный бикарбонат натрия в течение 10 с.Срезы обезвоживали 95%-ным и абсолютным этанолом до цитрозоля и монтировали с помощью SHUR/Mount. Изображения были получены с использованием светового микроскопа Zeiss Axiovert 200 при 10-кратном увеличении для изображения всего среза с последующим 40-кратным увеличением для дальнейшего фокусирования на краях и центре раны. Изображения с 40-кратным увеличением количественно определяли по положительным клеткам с использованием программного обеспечения ImageJ, а затем нормализовали к общему количеству клеток в поле 40-кратного увеличения.

Иммунофлуоресценция

Клетки

промывали фосфатно-солевым буфером (PBS) и фиксировали в течение 15 мин в 4% параформальдегиде (Alfa Aesar, Карлсруэ, Германия).Фиксированные клетки промывали в PBS и пермеабилизировали в течение 10 мин 0,5% раствором Triton X-100 в PBS. Клетки снова промывали и затем блокировали в течение 30 мин 1% бычьим сывороточным альбумином в 0,5% тритоне Х-100 в PBS. Добавляли первичное антитело мышиное моноклональное αSMA (анти-αSMA, 1:200; клон 1A4; ebioscience, Сандиего, Калифорния, США) и инкубировали в течение ночи при 4°C. После промывки PBS вторичное антитело добавляли в 1% бычьего сывороточного альбумина в 0,5% Triton X-100 в PBS и инкубировали в течение 1 ч при комнатной температуре в темноте (Alexa Fluor 488 ослиный антимышиный, 1:500; Life Technologies, Юджин, Орегон, США).Затем клетки трижды промывали PBS, предметные стекла помещали в среду для заливки Vectashield с 4′,6-диамидино-2-фенилиндолом (DAPI; Vector Laboratories, Burlingame, CA, USA). Клетки исследовали и фотографировали с использованием системы флуоресцентной визуализации Apotome Axiovert при 10-кратном увеличении (Zeiss, Оберкохен, Германия). Делали четыре изображения на лунку, и визуализировали две лунки, одна лунка представляла собой клетки, обработанные AGWJ, и одна лунка представляла собой контрольные обработанные клетки.

Анализ жизнеспособности клеток

Жизнеспособность клеток определяли с использованием набора для анализа люминесцентной жизнеспособности клеток CellTiter-glo (G7571 Promega, Мэдисон, Висконсин, США).Вкратце, клетки высевали в 96-луночный планшет и оставляли расти в течение 24 часов при 37°C в инкубаторе с 5% CO2. Через 24 ч среду отсасывали и к клеткам добавляли среду для обработки AGWJ или контрольную среду. Планшет снова инкубировали в течение 24 ч в инкубаторе. После 24-часовой инкубации с обработкой субстрат титра клеток glo добавляли к буферу, а затем добавляли в планшет. Раствор клеточного титра glo добавляли в соотношении 1:1 к объему среды в лунках. Планшет встряхивали для смешивания раствора со средой, а затем инкубировали в течение 10 мин при комнатной температуре.После этого люминесценцию считывали с помощью гибридного многорежимного ридера микропланшетов Synergy h5 (100 Tigan Street Winooski, VT, USA).

Препарат клеточного лизата

Лизаты клеток готовили на льду. Среду отсасывали из клеток. Клетки промывали PBS, затем PBS отсасывали. Затем к клеткам добавляли буфер для лизиса (RIPA) с 5 мМ ЭДТА, 1× ингибитором протеазы и ингибитором фосфатазы. 150 мкл буфера для лизиса добавляли в 10-сантиметровый планшет с клетками. Клетки соскребали с планшета клеточным скребком.Раствор помещали в пробирку Эппендорфа и инкубировали на льду в течение 30 мин, встряхивая каждые 10 мин. Затем клеточный лизат центрифугировали при 4°С в течение 30 мин при 20000×g. Супернатант собирали в пробирку Эппендорф и хранили при -80°С.

Вестерн-блот-анализ

Вкратце, клеточные лизаты (15 мкг белка на лунку) разделяли в 10% геле SDS-PAGE, затем белки переносили на нитроцеллюлозную мембрану, после чего блоты блокировали 5% обезжиренным молоком в буфере TBST.Блоты трижды промывали буфером TBST, а затем блоты исследовали с использованием мышиного моноклонального αSMA (анти-αSMA, 1:1000; клон 1A4; ebioscience, Сандиего, Калифорния, США), мышиного моноклонального виментина (анти-виментин, 1:1000). ; Thermofisher Scientific, Уолтем, Массачусетс, США). В качестве контроля загрузки использовали GAPDH (анти-GAPDH, 1:5000, Cell Signaling, Danvers MA, США). Первичные антитела инкубируют в течение ночи при 4°С. Интенсивность полос определяли, нормализовали и определяли количественно с помощью программного обеспечения Chemidoc и Image Lab 5.0 (Bio-Rad Laboratories).

Статистический анализ

Статистические сравнения между группой лечения AGWJ и контрольной группой были выполнены с использованием для анализа двустороннего критерия Стьюдента t . Значение P <0,05 считалось статистически значимым. Данные были графически представлены как среднее значение целевой группы ± 95% доверительный интервал. Для анализа данных использовался Microsoft Excel.

Результаты

Лечение AGWJ улучшает заживление ран у мышей

Чтобы проверить, есть ли какие-либо положительные эффекты AGWJ на ускорение заживления ран in vivo , мы провели два исследования заживления ран на мышиной модели.Мы провели 5-дневное и 7-дневное точечное исследование. Длину раны и, следовательно, закрытие раны анализировали с помощью окрашивания трихомами иссеченных ран после окончания обоих исследований. Результаты показали, что через 5 дней по сравнению с контрольным лечением (рис. 1А) лечение AGWJ привело к значительному уменьшению размера раны (рис. 1В). Длину раны измеряли от края интактной кожи справа через ложе раны до интактной кожи слева от раны. Все раны были измерены, и средняя длина ран для контрольных обработанных ран составила 4184.09 мкм ± 358,18, а для ран, обработанных AGWJ, средняя длина раны составила 2673,53 мкм ± 379,02. * P <0,05 (рис. 1С). Для 7-дневного периода лечения результаты также показывают резкое сокращение длины раны при лечении AGWJ по сравнению с контролем, однако данные не показывают значимости (рис. 1D-F). Эти результаты показывают, что лечение AGWJ способствует ускоренному заживлению ран, наблюдаемому за счет более короткой длины раны и, следовательно, более быстрого закрытия раны в фазе пролиферации заживления кожи у молодых мышей.

Рисунок 1. Влияние лечения AGWJ на заживление ран in vivo через 5 дней и 7 дней . Длину раны оценивали с помощью окрашивания трихромом. (A) Репрезентативное изображение, показывающее длину контрольной раны после 5-дневного исследования заживления раны. (B) Репрезентативная рана, обработанная AGWJ, демонстрирующая заживление в конце 5 дней. (C) Количественный анализ результатов окрашивания трихромом, сравнивающий длину ран между контрольной группой и ранами, обработанными AGWJ. (D) Репрезентативное изображение, показывающее длину контрольной раны после 7-дневного исследования заживления ран. (E) Репрезентативная рана, обработанная AGWJ, демонстрирующая заживление в конце 7 дней. (F) Количественный анализ результатов окрашивания трихромом, сравнивающий длину ран между контрольной группой и ранами, обработанными AGWJ. Показанные данные представляют собой средние ± 95% доверительный интервал. P <0,05 по сравнению с контролем. N = 3 для AGWJ и N = 3 для контрольных мышей, получавших 5-дневное исследование. N = 6 для контрольных мышей для 7-дневного исследования, N = 3 для обработанных мышей, каждый N представляет одно животное. Черная стрелка показывает границу раны и неповрежденной кожи. *Указывает значимость p < 0,05 по сравнению с контролем.

Лечение AGWJ не влияет на пролиферацию клеток или жизнеспособность клеток фибробластов

В попытке установить механизм улучшения заживления ран, наблюдаемого у мышей после лечения ран AGWJ, мы стремились определить, влияет ли лечение AGWJ на пролиферацию клеток в ране.Чтобы исследовать это, мы количественно определили общее количество клеток в центре раневого ложа в поле высокого увеличения (20-кратное увеличение). Результаты не показали существенной разницы в количестве клеток между контрольными обработанными (дополнительная фигура 2A) и обработанными AGWJ ранами (дополнительная фигура 2B) в течение 5 дней (дополнительная фигура 2C). На 7-й день результаты, полученные для контрольных обработанных ран (дополнительная фигура 2D) и ран, обработанных AGWJ (дополнительная фигура 2E), также не показали значительной разницы (дополнительная фигура 2F), что позволяет предположить, что AGWJ не влияет на клеточность ран.Несколько факторов влияют на клеточность тканей, включая скорость пролиферации. Сначала мы измерили жизнеспособность клеток in vitro в фибробластах человека, подвергнув клетки воздействию AGWJ и контрольной среды. Результаты не показали существенной разницы в жизнеспособности между AGWJ и контрольными клетками (дополнительная фигура 3). Чтобы проверить состояние пролиферации клеток в грануляционной ткани 90–110 in vivo 90–111, мы также проанализировали экспрессию BrdU с помощью анализа IHC. Положительную экспрессию белка BrdU количественно оценивали по коричневому пятну в ядрах фибробластов в раневом ложе на 5-й и 7-й день.Хотя количество BrdU-положительных клеток в группе, получавшей AGWJ (рис. 2B), было немного ниже, чем в контрольной группе (рис. 2A), через 5 дней после ранения (рис. 2C) и было выше, чем в контроле, через 7 дней после ранения (рис. 2F). ), разница в результатах между AGWJ (рис. 2B, E) и контролем (рис. 2A, D) не была значительной. Таким образом, в совокупности наши результаты показывают, что AGWJ не способствует заживлению ран за счет модуляции пролиферации клеток в раневом ложе.

Рисунок 2.Анализ BrdU пролиферации клеток в раневом ложе после лечения AGWJ по сравнению с контролем. (A) Репрезентативное изображение IHC, показывающее BrdU-положительные клетки в раневом ложе контрольной обработанной раны через 5-дневный момент времени. (B) BrdU-положительные клетки в ране, обработанной AGWJ, через 5 дней. (C) Количественное определение BrdU-позитивных клеток в раневом ложе после лечения AGWJ в течение 5 дней по сравнению с контрольным лечением. На графике показан процент BrdU-положительных клеток в поле зрения при большом увеличении (40×). (D) Репрезентативное изображение IHC, показывающее BrdU-позитивные клетки в раневом ложе контрольной обработанной раны через 7 дней. (E) BrdU-положительные клетки в ране, обработанной AGWJ, через 7 дней. (F) Количественное определение BrdU-позитивных клеток в раневом ложе после лечения AGWJ в течение 7 дней по сравнению с контрольным лечением. На графике показан процент BrdU-положительных клеток в поле зрения при большом увеличении (40×). Показанные данные представляют собой средние ± 95% доверительный интервал. Для 7-дневного исследования N = 7 для мышей, получавших AGWJ, и N = 6 для контрольных мышей.Для 5-дневного исследования N = 3 для AGWJ и N = 3 для контрольных мышей. Каждый N представляет одно животное. Черные стрелки указывают на BrdU-положительные ядра, окрашенные в коричневый цвет, а наконечники стрелок указывают на BrdU-отрицательные синие ядра.

В отличие от пролиферации, AGWJ усиливает миграцию фибробластов

Поскольку наш анализ раны in vivo показал, что ускоренное заживление раны после лечения AGWJ не было связано с пролиферацией клеток в раневом ложе, мы исследовали возможность усиленной миграции клеток, вызывающей более быстрое закрытие раны.Миграция клеток является важным этапом при заживлении кожи (Amini-Nik et al., 2011, 2014). Чтобы проверить влияние лечения AGWJ на движение клеток при заживлении ран, миграцию клеток анализировали 90–110 in vitro 90–111 путем проведения анализа царапин. Использовали фибробласты человека, поскольку они являются основным клеточным компонентом дермы. В сливной лунке фибробластов были сделаны две горизонтальные царапины, и была добавлена ​​либо контрольная среда, либо обработка AGWJ. Изображения были сделаны в т = 0 ч и т = 24 ч (рис. 3А).Через 24 часа мы количественно оценили клеточную инфильтрацию в зоне царапин и наблюдали значительно большее количество клеток в зоне царапин для царапин, обработанных AGWJ, по сравнению с контролем. Для контрольных обработанных клеток в зону царапины мигрировало в среднем 58,85 ± 22,95 фибробластов, для AGWJ в царапину мигрировало в среднем 117,33 ± 22,86 клеток ( n = 3 контроля и n = 3 AGWJ, ** p <0,01) (рис. 3В). Следовательно, как показано на рисунке 3A, клетки фибробластов, обработанные AGWJ, начали закрывать рану через 24 часа, тогда как контрольные клетки имели минимальную миграцию в зону царапин.Таким образом, обработка фибробластов AGWJ повышает их миграционную способность. Мы также наблюдали, что лечение AGWJ изменило клеточную морфологию фибробластов. Через 24 часа фибробласты приобретали более удлиненный фенотип по сравнению с клетками, обработанными контрольной средой.

Рисунок 3. Анализ миграции клеток in vitro для фибробластов. (A) На верхней панели показаны репрезентативные изображения контрольной обработанной царапины в момент времени 0 часов по сравнению с контрольной обработанной царапиной через 24 часа.На нижней панели показан анализ царапин фибробластов с обработкой AGWJ в момент времени 0 ч, а затем визуализирована зона царапин после инкубации с AGWJ в течение 24 часов. (B) На графике показано среднее количество клеток фибробластов, проникших в зону царапин через 24 ч для клеток, обработанных контрольной средой, по сравнению с клетками, обработанными AGWJ. ** Указывает значимость p < 0,01 по сравнению с контролем.

Лечение AGWJ способствует развитию миофибробластического фенотипа

In Vitro

Поскольку мы обнаружили меньший размер ран в обработанных AGWJ ранах in vivo , а наши результаты in vitro продемонстрировали усиленную миграцию клеток после лечения AGWJ, наши результаты подтверждают мнение о том, что AGWJ усиливает миграцию клеток.И эта улучшенная миграция клеток является основным механизмом более быстрого заживления ран. Кроме того, как уже упоминалось, мы наблюдали изменение фенотипа клеток, обработанных AGWJ in vitro , и меньший размер раны in vivo , оба из которых указывают на промиофибробластический фенотип из-за лечения AGWJ, проводившегося ранее, что привело к к более быстрому сокращению, что характерно для ускоренного заживления ран. Чтобы оценить это in vitro , мы обрабатывали фибробласты AGWJ или контрольной средой и с помощью иммунофлуоресцентного анализа наблюдали резкое увеличение уровня белка αSMA в фибробластах после обработки AGWJ (фиг. 4B) по сравнению с обработанными контрольными клетками (фиг. 4A).Этот результат был подтвержден вестерн-блот-анализом, который обнаружил значительно более высокий уровень экспрессии белка αSMA в фибробластах, обработанных AGWJ, для двух разных образцов фибробластов человека (рис. 4C). Вестерн-блот-денситометрия для αSMA была нормализована к GAPDH, и количественная оценка показывает почти 8-кратное увеличение уровней белка αSMA после обработки AGWJ по сравнению с контрольной средой DMEM (рис. 4D). Кроме того, нормальные фибробласты человека демонстрируют высокий уровень виментина, который снижается после обработки AGWJ в течение 24 часов, что наблюдается в двух разных образцах фибробластов человека с помощью вестерн-блоттинга (дополнительная фигура 4).

Рисунок 4. Лечение AGWJ способствует развитию миофибробластического фенотипа in vitro , обнаруженного по экспрессии αSMA. (A) Иммунофлуоресцентное изображение фибробластов, обработанных контрольной средой, по сравнению с фибробластами, обработанными (B) AGWJ, после 24 часов обработки. Синяя флуоресценция DAPI представляет собой ядро, а красный родамин представляет собой αSMA. (C) Вестерн-блот-анализ двух нормальных клеток фибробластов человека (Hu-Fibro), обработанных либо контрольной средой DMEM, либо обработкой AGWJ в течение 24 часов для анализа экспрессии белка αSMA.Контроль загрузки представлял собой белок GAPDH. (D) Денситометрический анализ вестерн-блоттинга. Экспрессию белка αSMA нормализовали по GAPDH.

AGWJ усиливает дифференцировку фибробластов в миофибробласты в раневом ложе

Поскольку мы обнаружили повышенный уровень αSMA в фибробластах in vitro , что является характеристикой миофибробластов, мы хотели исследовать, переводится ли этот результат in vivo . Иммуногистохимический анализ αSMA в ранах, иссеченных в моменты времени 5 и 7 дней, показывает, что для момента времени 5 дней; раны, обработанные AGWJ, экспрессируют более высокие уровни αSMA (фиг. 5B), тогда как контрольные раны экспрессируют αSMA очень мало или вообще не экспрессируют (фиг. 5A).Удивительно, но напротив, на 7-й день мы обнаружили, что раневые ложа как для лечения AGWJ (рис. 5D), так и для контрольного лечения (рис. 5C) выражали высокие уровни αSMA. Следовательно, оказывается, что AGWJ ускоряет процесс заживления ран за счет более ранней дифференцировки фибробластов в миофибробласты, как видно на 5-й день, и, следовательно, укорачивает фазу пролиферации заживления кожных ран.

Рисунок 5. Влияние лечения AGWJ на экспрессию αSMA в раневом ложе in vivo .(А) Экспрессия αSMA в грануляционной ткани контрольных обработанных ран через 5 дней. (B) Экспрессия αSMA в грануляционной ткани обработанных AGWJ ран через 5 дней. (C) Экспрессия αSMA в грануляционной ткани контрольных обработанных ран через 7 дней. (D) Экспрессия αSMA в грануляционной ткани обработанных AGWJ ран через 7 дней.

Обсуждение

Существует значительное количество литературы, в которой исследуются положительные эффекты клеточной терапии с использованием МСК WJ, отдельно или в составе каркаса (Zebardast et al., 2010; Азари и др., 2011; Шохара и др., 2012 г.; Арно и др., 2014; Фонг и др., 2014 г.; Рибейро и др., 2014; Сабапати и др., 2014). Появляющиеся сообщения показывают многообещающую роль децеллюляризованных биологических матриц для восстановления тканей (Boccafoschi et al., 2015). Наша группа сообщила, что кондиционированная среда WJ-MSC оказывает положительное влияние на заживление ран у человека in vivo в эксцизионных ранах на всю толщину кожи на мышиной модели посредством паракринной передачи сигналов с помощью нескольких механизмов: усиление экспрессии генов факторов заживления ран, такие как TGF-ß2, HIF-1α и PAI-1, в дополнение к усилению пролиферации и миграции фибробластов кожи человека (Arno et al., 2014). Известно, что ниша или микроокружение стволовых клеток имеет решающее значение для поддержки МСК и что между клетками и окружающей средой происходят значительные перекрестные помехи и передача сигналов (Boccafoschi et al., 2015; Khodadi et al., 2016). Кроме того, в вартоновом желе находится секретом стволовых клеток. Сообщается, что в дополнение к тому, что он является резервуаром МСК, Wharton’s Jelly является отличным источником проангиогенных факторов и факторов, способствующих заживлению ран, таких как IGF-1, TGF-ß1, VEGF, PDGF, EGF, bFGF, HGF, IL. -6 и ИЛ-8 (Соболевский и др., 2005; Лю и др., 2012; Арно и др., 2014; Биазар, 2014; Эдвардс и др., 2014). Эти факторы, как полагают, также стимулируют клетки внутри Wharton’s Jelly к продукции большого количества компонентов ECM (Sobolewski et al., 2005). Поскольку AGWJ присутствует в нативной нише МСК и поддерживает эти стволовые клетки, помимо того, что он является источником факторов заживления ран, мы предположили, что AGWJ оказывает благотворное влияние на заживление кожных ран. Поэтому мы выделили желе Уортона и ацеллюляризировали его (дополнительная фигура 1).В пуповине неизвестно, способствует ли AGWJ поведению стволовых клеток и поддерживает эти MSC в их нише, или другие типы клеток вносят вклад в микроокружение и, следовательно, влияют на поведение стволовых клеток.

Результаты этого исследования показали, что AGWJ приводит к заживлению в более ранний момент времени на мышиной модели, продемонстрировавшей значительное сокращение длины раны после лечения AGWJ по сравнению с контрольным лечением через 5 дней. Мы выбрали 5 дней и 7 дней в качестве временных точек для этого исследования, потому что в мышиной модели 5-й день считается пиком фазы пролиферации, а 7-й день — началом фазы созревания раны при заживлении ран (Bielefeld et al., 2013). Несмотря на положительный эффект на заживление ран у молодых животных, о котором мы здесь сообщаем, еще предстоит определить, может ли этот эффект восстановить недостаточное заживление, наблюдаемое у пожилых пациентов или пациентов с диабетом. Необходимы дополнительные исследования для изучения их влияния на модель заживления дефектной кожи.

Мы также попытались понять механизм ускоренного заживления ран, исследуя несколько возможных механизмов, таких как: жизнеспособность клеток, пролиферация клеток и миграция клеток. Мы начали с исследования клеточности в ране, подсчитав количество клеток в грануляционной ткани при HPF, а также обнаружив клеточную пролиферацию посредством окрашивания ран BrdU.Результаты не показали существенной разницы между AGWJ и контролем. Таким образом, наш анализ ран in vivo предполагает, что ускоренное заживление ран после лечения AGWJ не было связано с увеличением числа клеток. Чтобы дополнительно охарактеризовать это наблюдение in vitro , мы провели анализ жизнеспособности с использованием AGWJ и обработки контрольной средой. Пролиферация клеток может оказывать влияние на жизнеспособность клеток и, следовательно, на клеточность. Опять же, наши данные показали, что AGWJ не влияет на жизнеспособность фибробластов in vitro .В совокупности этот набор данных устанавливает, что механизм действия AGWJ заключается не в усилении пролиферации, жизнеспособности и клеточности клеток.

Затем мы исследовали возможность усиленной миграции клеток, вызывающей более быстрое закрытие раны. Подвижность и миграция клеток играют решающую роль во время заживления ран (Schneider et al., 2010; Amini-Nik et al., 2014). Действительно, наши результаты in vitro подтвердили, что AGWJ вызывает повышенную миграцию фибробластов. Кроме того, мы наблюдали изменение фенотипа фибробластных клеток, обработанных AGWJ, и меньший размер раны in vivo , оба из которых предполагают промиофибробластический фенотип.ИГХ-анализ ран на αSMA показал повышенную экспрессию αSMA в грануляционной ткани через 5 дней по сравнению с контрольными обработанными ранами. Удивительно, но через 7 дней экспрессия αSMA в контрольных и обработанных AGWJ ранах оказалась одинаковой. Это говорит о том, что AGWJ ускоряет фазу пролиферации заживления ран, вызывая более быструю дифференцировку фибробластов в миофибробласты, что подтверждается экспрессией αSMA. Контрольные раны дифференцируются в обычном порядке и наверстывают упущенное позже, через 7 дней после ранения.Этот результат был подтвержден нашим анализом in vitro фибробластов после лечения AGWJ, который показал повышенную экспрессию экспрессии белка αSMA по сравнению с контролем.

В этом отчете впервые показано, что AGWJ улучшает заживление ран, ускоряя фазу пролиферации заживления кожи, в основном за счет улучшения миграции клеток и закрытия ран. Несколько заболеваний, в том числе раны у пациентов с диабетом у пожилых пациентов, связаны с замедленным заживлением ран, и AGWJ может быть лекарством для этой группы пациентов.Хотя мы обнаружили механизм через сигнальный путь TGF-бета для положительного эффекта AGWJ на заживление кожи, еще предстоит проверить, могут ли другие факторы способствовать этому наблюдению. Будущие исследования должны быть сосредоточены на дальнейшей характеристике AGWJ и поиске активных ингредиентов, особенно для компонентов сигнальных путей, которые играют важную роль в процессе заживления кожи, таких как сигнальные пути Wnt/β-катенин, а также сигнальные пути TGF-β/Smad 2. (Амини Ник и др., 2007; Пун и др.., 2009; Билефельд и др., 2011). Поскольку AGWJ улучшает заживление ран в основном за счет миграции клеток, а не пролиферации клеток, он может быть идеальным средством для недостаточного заживления кожи, связанного с недостаточной миграцией. Недавно мы сообщили, что пожилые пациенты с ожогами имеют уменьшенный пул стволовых клеток, недостаточную миграцию МСК и измененную активацию важнейших сигнальных путей для заживления кожи (Jeschke et al., 2015). Таким образом, поскольку наши данные свидетельствуют о том, что AGWJ усиливает миграцию клеток, вызывает более раннюю дифференцировку фибробластов в миофибробласты и, следовательно, способствует более раннему сокращению раны, это лечение может иметь значительные преимущества в заживлении ран, особенно для этой группы пациентов.

Экономика AGWJ

Результаты этого исследования демонстрируют открытие AGWJ, который является очень нативным и нишевым материалом стволовых клеток внутри пуповины с целью заживления кожных ран. Набираем примерно по 5 мл студня из каждой пуповины. К этим 5 мл желе мы добавили 15 мл полной среды DMEM и повторно суспендировали желе, так что мы получили в общей сложности 20 мл раствора. Для нашего исследования in vivo на мышах мы поместили 50 мкл раствора AGWJ, смешанного с 50 мкл матригеля (1:1), на каждую рану, покрывая и усиливая 0.3 см 2 площадь раны у животного. В совокупности каждая пуповина обеспечивает материал AGWJ примерно для 115 см 2 области раны (дополнительная фигура 5). В отличие от секретома MSC, для выделения которого требуется оборудованное помещение, выделение AGWJ требует минимального оборудования и может быть выполнено в любом учреждении в развивающихся странах.

В заключение, мы впервые демонстрируем, что AGWJ улучшает заживление ран, и устанавливаем механизм его роли в качестве потенциального терапевтического средства для недостаточного заживления кожных ран.Поскольку каждая пуповина обеспечивает приблизительно достаточное количество AGWJ, чтобы покрыть 115 см 2 площади раны, ее легко изолировать, и она доступна во всем мире; Пуповина AGWJ имеет далеко идущие преимущества для заживления ран не только в развитых странах, но и в развивающихся странах, где недорогие и доступные средства для заживления ран имеют острую потребность.

Вклад авторов

NB, MJ и SA внесли существенный вклад в разработку концепции и дизайна, сбор данных, анализ и интерпретацию данных для этого исследования.NB и SA отвечали за создание модели ран животных, а с помощью LM эти авторы отвечали за организацию, анализ и интерпретацию данных in-vivo . NB провела культуру клеток и экспериментов in vitro . LM провел анализ данных вслепую. Э.Г. провел операции по получению пуповины для исследования. SA и NB внесли свой вклад в написание рукописи и внесение изменений. Все авторы дали согласие на публикацию этой версии рукописи.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Благодарности

Г-жа Дженнифер Хе, г-жа Андреа Кей Дату и финансирующие агентства Toronto Hydro and Medicine by Design-Seed грант (премия EMHSeed, 16 февраля 2016 г.).

Дополнительный материал

Дополнительный материал к этой статье можно найти в Интернете по адресу: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fphys.2017.00200/full#supplementary-material

Дополнительный рисунок 1. Децеллюляризация желе Уортона . Степень децеллюляризации вартонова студня оценивали с помощью иммунофлуоресцентного окрашивания ядер DAPI. На первой панели показан полный WJ до децеллюляризации с большим количеством клеток, на второй панели показан AGWJ без каких-либо клеток.

Дополнительный рисунок 2. Влияние лечения AGWJ на клеточность раневого ложа. (A) Анализ окрашивания трихом , использованный для количественного определения количества клеток в центре раны. (A) Репрезентативное изображение, показывающее клеточность раневого ложа после 5 дней контрольного лечения. (B) Изображение, показывающее клеточность ложа раны после лечения AGWJ через 5 дней. (C) Количественное определение среднего количества клеток в ложе раны, сравнивающее контрольные обработанные раны с обработанными AGWJ ранами через 5 дней. (D) Репрезентативное изображение, показывающее клеточность раневого ложа после 7 дней контрольного лечения. (E) Изображение, показывающее клеточность ложа раны после лечения AGWJ в течение 7 дней. (F) Количественное определение среднего количества клеток в раневом ложе при сравнении контрольных обработанных ран с обработанными AGWJ ранами после 7-дневного лечения. На графике показано среднее количество клеток в ложе раны в контроле по сравнению с мышами, получавшими AGWJ, при 20-кратном увеличении. Показанные данные представляют собой средние ± 95% доверительный интервал. Для 7-дневного исследования N = 7 для мышей, получавших AGWJ, и N = 6 для контрольных мышей, каждый n представляет одно животное. Для 5-дневного исследования N = 3 для AGWJ и N = 3 для контрольных мышей.

Дополнительный рисунок 3. AGWJ не влияет на жизнеспособность фибробластов in vitro . Количественный анализ жизнеспособности клеток после контроля и обработки AGWJ в течение 24 часов. Люминесценцию считывали с помощью гибридного многорежимного считывателя микропланшетов Synergy h5.

Дополнительный рисунок 4. Лечение AGWJ снижает экспрессию виментина в фибробластах . Вестерн-блот анализ двух нормальных клеток фибробластов человека (Hu-Fibro), обработанных либо контрольной средой DMEM, либо обработкой AGWJ в течение 24 часов.Контроль загрузки представлял собой белок GAPDH.

Дополнительный рисунок 5. Схема, иллюстрирующая процедуру выделения AGWJ и последующее экономное использование AGWJ в качестве средства для заживления ран .

Ссылки

Amini-Nik, S., Cambridge, E., Yu, W., Guo, A., Whetstone, H., Nadesan, P., et al. (2014). Адгезия и миграция миелоидных клеток, регулируемая β-катенином, определяют заживление ран. Дж. Клин. Вкладывать деньги. 124, 2599–2610. DOI: 10.1172/JCI62059

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Амини Ник, С., Эбрахим, Р.П., Ван Дам, К., Кассиман, Дж.Дж., и Тейпар, С. (2007). TGF-бета модулирует стабильность бета-катенина и передачу сигналов при мезенхимальной пролиферации. Экспл. Сотовый рез. 313, 2887–2895. doi: 10.1016/j.yexcr.2007.05.024

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Амини-Ник С., Глэнси Д., Боймер С., Уэтстоун Х., Келлер С., Алман Б. и др. (2011). Клетки, экспрессирующие Pax7, способствуют заживлению кожных ран, регулируя размер рубца посредством процесса, опосредованного бета-катенином. Стволовые клетки 29, 1371–1379. doi: 10.1002/стел.688

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Арно, А.И., Амини-Ник, С., Блит, П.Х., Аль-Шехаб, М., Бело, К., Херер, Э., и соавт. (2014). Влияние паракринной передачи сигналов мезенхимальных стволовых клеток Wharton’s желе человека на келоидные фибробласты. Стволовые клетки Перевод. Мед. 3, 299–307. doi: 10.5966/sctm.2013-0120

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Атие, Б.С., Иоаннович Дж., Аль-Амм К.А. и Эль-Муса К.А. (2002). Лечение острых и хронических открытых ран: важность влажной среды для оптимального заживления ран. Курс. фарм. Биотехнолог. 3, 179–195. дои: 10.2174/1389201023378283

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Азари О., Бабаи Х., Дерахшанфар А., Нематоллахи-Махани С. Н., Пурсахеби Р. и Мошрефи М. (2011). Влияние трансплантированных мезенхимальных стволовых клеток, выделенных из вартонова желе пуповины козы, на заживление кожных ран; гистопатологическая оценка. Вет. Рез. коммун. 35, 211–222. doi: 10.1007/s11259-011-9464-z

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Биазар, Э. (2014). Использование стволовых клеток пуповины и пуповинной крови для восстановления и регенерации тканей. Экспертное заключение. биол. тер. 14, 301–310. дои: 10.1517/14712598.2014.867943

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Билефельд, К. А., Амини-Ник, С., и Алман, Б. А. (2013). Заживление кожных ран: задействование путей развития для регенерации. Сотовый. Мол. Жизнь наук. 70, 2059–2081. doi: 10.1007/s00018-012-1152-9

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Билефельд, К. А., Амини-Ник, С., Уэтстоун, Х., Пун, Р., Юн, А., Ван, Дж., и соавт. (2011). Фибронектин и бета-катенин действуют в регуляторной петле в дермальных фибробластах, модулируя заживление кожи. Дж. Биол. хим. 286, 27687–27697. doi: 10.1074/jbc.M111.261677

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Боккафоски, Ф., Ботта М., Фузаро Л., Копес Ф., Рамелла М. и Каннас М. (2015). Децеллюляризованные биологические матрицы: интересный подход к восстановлению и регенерации сердечно-сосудистой ткани. J. Tissue Eng. Реген. Мед. doi: 10.1002/term.2103. [Epub перед печатью].

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Брански Л.К., Гауглиц Г.Г., Херндон Д.Н. и Йешке М.Г. (2009). Обзор генной терапии и терапии стволовыми клетками при заживлении кожных ран. Бернс 35, 171–180.doi: 10.1016/j.burns.2008.03.009

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Du, T., Zou, X., Cheng, J., Wu, S., Zhong, L., Ju, G., et al. (2013). Желеобразные мезенхимальные стромальные клетки Wharton человека уменьшают почечный фиброз посредством индукции синтеза нативных и чужеродных факторов роста гепатоцитов в поврежденных эпителиальных клетках канальцев. Стволовые клетки Res. Тер 4:59. дои: 10.1186/scrt215

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Эдмондсон, С.Р., Тумигер С.П., Вертер Г.А. и Райт С.Дж. (2003). Эпидермальный гомеостаз: роль систем гормона роста и инсулиноподобного фактора роста. Эндокр. Ред. 24, 737–764. doi: 10.1210/er.2002-0021

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Эдвардс С.С., Завала Г., Прието С.П., Эллиотт М., Мартинес С., Эганья Дж.Т. и др. (2014). Функциональный анализ выявил ангиогенный потенциал мезенхимальных стволовых клеток человека из вартонова желе в регенерации дермы. Ангиогенез 17, 851–866. doi: 10.1007/s10456-014-9432-7

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Фонг, С.Ю., Там, К., Чейятрайвендран, С., Ган, С.У., Гаутхаман, К., Армугам, А., и соавт. (2014). Стволовые клетки Wharton’s желе человека и их кондиционированная среда улучшают заживление эксцизионных и диабетических ран. Дж. Сотовый. Биохим. 115, 290–302. doi: 10.1002/jcb.24661

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Йешке, М.Г., Пацурис Д., Станойчич М., Абдуллахи А., Рехоу С., Пинто Р. и соавт. (2015). Патофизиологическая реакция на ожоги у пожилых. EBioMedicine 2, 1536–1548. doi: 10.1016/j.ebiom.2015.07.040

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Йешке, М. Г., Пинто, Р., Костфорд, С. Р., и Амини-Ник, С. (2016). Пороговый возраст и размер ожога связаны с неблагоприятными исходами у пожилых людей после ожоговой травмы. Бернс 42, 276–281. doi: 10.1016/j.горит.2015.12.008

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ходади, Э., Шахраби, С., Шахджахани, М., Азанде, С., и Саки, Н. (2016). Роль фактора стволовых клеток в плацентарной нише. Рез. клеточной ткани. 366, 523–531. doi: 10.1007/s00441-016-2429-3

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Лю С., Юань М., Хоу К., Чжан Л., Чжэн С., Чжао Б. и др. (2012). Иммунная характеристика мезенхимальных стволовых клеток в желе Уортона пуповины человека и производных хрящевых клеток. Сотовый. Иммунол. 278, 35–44. doi: 10.1016/j.cellimm.2012.06.010

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Марфия Г., Навоне С.Е., Ди Вито К., Уги Н., Табано С., Миоццо М. и др. (2015). Мезенхимальные стволовые клетки: возможности терапии и лечения хронических незаживающих кожных ран. Органогенез 11, 183–206. дои: 10.1080/15476278.2015.1126018

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Маркесон, Д., Плит, Дж. М., Шарп, Дж. Р., Харрис, А. Л., Сейфалиан, А. М., и Ватт, С. М. (2015). Рубцевание, стволовые клетки, каркасы и восстановление кожи. J. Tissue Eng. Реген. Мед. 9, 649–668. doi: 10.1002/term.1841

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

McElreavey, K.D., Irvine, A.I., Ennis, K.T., and McLean, W.H. (1991). Выделение, культивирование и характеристика фибробластоподобных клеток, полученных из вартоновой желеобразной части пуповины человека. Биохим. соц. Транзакция. 19:29с. дои: 10.1042/bst019029s

Реферат PubMed | Полнотекстовая перекрестная ссылка

Moodley, Y., Atienza, D., Manuelpillai, U., Samuel, C.S., Tchongue, J., Ilancheran, S., et al. (2009). Мезенхимальные стволовые клетки пуповины человека уменьшают фиброз вызванного блеомицином повреждения легких. 90 110 утра. Дж. Патол. 175, 303–313. doi: 10.2353/ajpath.2009.080629

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Николай, М.Н., Йешке М. Г. и Амини-Ник С. (2016a). Клеточный двухслойный пуллулан-желатиновый гидрогель для регенерации кожи. Ткань Eng. Часть А 22, 754–764. doi: 10.1089/ten.tea.2015.0536

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Нунан, Р., Хардинг, К.Г., и Мартин, П. (2014). Клинические проблемы хронических ран: поиск оптимальной животной модели для воспроизведения их сложности. Дис. Модели Механ. 7, 1205–1213. doi: 10.1242/dmm.016782

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пирджали, Т., Азарпира, Н., Аятоллахи, М., Агдаи, М. Х., Герамизаде, Б., и Талаи, Т. (2013). Выделение и характеристика мезенхимальных стволовых клеток человека, полученных из вартонова желе пуповины человека и амниотической мембраны. Междунар. Дж. Пересадка органов. Мед. 4, 111–116.

Реферат PubMed | Академия Google

Пун Р., Ник С. А., Ан Дж., Слэйд Л. и Алман Б. А.(2009). Бета-катенин и бета-трансформирующий фактор роста играют различную роль в регуляции подвижности фибробластов и индукции сокращения решетки коллагена. BMC Cell Biol. 10:38. дои: 10.1186/1471-2121-10-38

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Рибейро, Дж., Перейра, Т., Аморим, И., Касейро, А.Р., Лопес, М.А., Лима, Дж., и соавт. (2014). Клеточная терапия МСК человека, выделенных из пуповинного студня, ассоциированного с мембраной ПВА, при лечении хронических кожных ран. Междунар. Дж. Мед. науч. 11, 979–987. doi: 10.7150/ijms.9139

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Сабапати, В., Сундарам, Б., В.М.С., Манкужи, П., и Кумар, С. (2014). Пластичность мезенхимальных стволовых клеток Human Wharton Jelly способствует заживлению кожных ран без шрамов и росту волос. PLoS ONE 9: E 93726. doi: 10.1371/journal.pone.0093726

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Шнайдер, Л., Cammer, M., Lehman, J., Nielsen, S.K., Guerra, C.F., Veland, I.R., et al. (2010). Направленная миграция клеток и хемотаксис при заживлении ран в ответ на PDGF-AA координируются первичной ресничкой в ​​фибробластах. Клеточная физиол. Биохим. 25, 279–292. дои: 10.1159/000276562

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Шалитин Н., Шлезингер Х., Леви М.Дж., Кесслер Э. и Кесслер-Айсексон Г. (2003). Экспрессия энхансера проколлагена С-протеиназы в культивируемых фибробластах сердца крысы: свидетельство совместной регуляции с коллагеном I типа. Дж. Сотовый. Биохим. 90, 397–407. doi: 10.1002/jcb.10646

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Шохара Р., Ямамото А., Такикава С., Ивасе А., Хиби Х., Киккава Ф. и др. (2012). Мезенхимальные стромальные клетки вартонова студня пуповины человека ускоряют заживление ран за счет паракринных механизмов. Цитотерапия 14, 1171–1181. дои: 10.3109/14653249.2012.706705

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Соболевский К., Малковски А., Банковски Э. и Яворски С. (2005). Желе Уортона как резервуар пептидных факторов роста. Плацента 26, 747–752. doi: 10.1016/j.placenta.2004.10.008

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Валаччи Г., Занарди И., Стикоцци К., Боччи В. и Травальи В. (2012). Новые темы в лечении кожных ран. Энн. Академик Нью-Йорка науч. 1259, 136–144. doi: 10.1111/j.1749-6632.2012.06636.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ю, К., Wang, F., Jin, C., Huang, X., Miller, D.L., Basilico, C., et al. (2003). Роль фактора роста фибробластов 1 и 2 типа в индуцированном четыреххлористым углеродом повреждении печени и фиброгенезе. 90 110 утра. Дж. Патол. 163, 1653–1662. doi: 10.1016/S0002-9440(10)63522-5

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Зебардаст, Н., Ликориш, Д., и Дэвис, Дж. Э. (2010). Периваскулярные клетки пуповины человека (HUCPVC): источник мезенхимальных клеток для заживления кожных ран. Органогенез 6, 197–203. doi: 10.4161/org.6.4.12393

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пупочная гранулема: причины, лечение, последующий уход

Пуповина вашего ребенка проходит небольшое путешествие, превращаясь из бледного бесформенного комка в сморщенный, потемневший кусочек кожи, который отпадает примерно через две недели после его рождения. Но иногда во время этого процесса, вместо того, чтобы высыхать и отпадать, область может сформировать то, что известно как гранулема, кусочек рубцовой ткани, который остается на пупке.

Хотя это довольно распространенное заболевание не причинит вреда вашему ребенку, если оно не проходит само по себе, педиатру вашего ребенка может потребоваться его лечение, чтобы предотвратить возможную инфекцию. Читайте дальше, чтобы узнать больше о пупочных гранулемах, в том числе о том, как их обнаружить и как их лечить.

Что такое пупочная гранулема?

Гранулема пуповины у младенцев выглядит как небольшое круглое образование, которое появляется в середине пупка после отпадения культи пуповины.Красноватый кусок рубцовой ткани часто покрыт прозрачной слизью, а не выглядит сухим, как остальная кожа вашего ребенка.

Пупочные гранулемы также могут иногда появляться у взрослых, иногда развиваясь после татуировки или пирсинга пупка.

Пупочная грыжа — это еще одно состояние, которое может выглядеть как гранулема (т. е. припухлость или выпячивание возле пупка), но это когда кишечник проталкивает стенку мышц живота и появляется в середине пупка.Хотя они чаще всего встречаются у детей в возрасте до 6 месяцев (у 20 процентов они разовьются), пупочные грыжи иногда могут поражать детей старшего возраста и взрослых.

Что вызывает пупочную гранулему?

Не совсем ясно, что вызывает замедление процесса заживления пуповины у некоторых младенцев, но пупочные гранулемы встречаются примерно у 1 из 500 новорожденных. Эта избыточная ткань может образоваться из-за слабовыраженной инфекции или задержки или неравномерного отделения культи пуповины.

Пупочные гранулемы могут иметь размер до 10 миллиметров и имеют тенденцию к росту, если их не лечить.В результате эта масса может позволить бактериям проникнуть внутрь, потенциально вызывая пупочную инфекцию.

Как лечить пупочную гранулему?

Лечение пупочной гранулемы одинаково как у детей, так и у взрослых. Как правило, нитрат серебра является основным средством, так как это химическое вещество может прижигать рану, что останавливает любое кровотечение и предотвращает инфекцию.

Несмотря на безболезненность, нитрат серебра может вызывать ожоги, поэтому ваш педиатр будет проявлять к нему особую осторожность.Жидкий азот — еще одна возможность, и он используется аналогично нитрату серебра. На гранулему наносится очень небольшое количество, что, в свою очередь, заставляет ее «замерзать» и отпадать.

Хотя операция по удалению пупочной гранулемы требуется редко, она может быть лучшим вариантом, если в случае вашего ребенка требуется многократное лечение нитратом серебра. Эта процедура, называемая двойной лигатурой, заключается в удалении пупочной гранулемы с помощью скальпеля или связывании ее двумя кусочками нити.

Советы по уходу на дому

После лечения ваш педиатр поделится советами по уходу, в том числе о том, как купать ребенка с пупочной гранулемой.Как правило, вы будете соблюдать правила регулярного ухода за пуповиной. Вот что вы должны помнить:

  • Содержите его в чистоте и сухости. Как можно больше подвергайте культю пуповины воздействию воздуха и избегайте использования медицинского спирта и мазей для лечения.
  • Подгузник с осторожностью. Держите область культи вашего ребенка открытой под подгузником, загнув верхнюю часть или купив детские подгузники со специальным вырезом на талии. И часто меняйте подгузники, чтобы влага и отходы не попали на пупок.
  • Оденьте его свободно. Как и в случае с подгузниками, одевайте ребенка в свободную, воздушную одежду, а не в обтягивающие комбинезоны, которые могут слишком сильно давить на его живот.
  • Обмывайте его губкой. У вас может возникнуть один вопрос: можно ли купать ребенка с пупочной гранулемой. Увы, долгие мыльные ванны в ванне не способствуют подсушиванию свежей раны, поэтому лучше всего купать ребенка губкой и не допускать намокания пупка.
  • Оставьте это в покое. Пусть природа идет своим чередом. Не возитесь с культей и не пытайтесь удалить образовавшуюся корку.

Сколько времени требуется для заживления пупочной гранулемы?

После лечения нитратом серебра пупочная гранулема должна уменьшиться и исчезнуть примерно через неделю. Временные рамки аналогичны, если вашему ребенку сделали операцию на двойной лигатуре — ткань отмирает и отпадает в течение 7–14 дней.

Следите за заживлением пупочной гранулемы вашего ребенка и сообщите своему педиатру, если заметите сильное покраснение или кровотечение, зловонные желтоватые выделения из области пуповины или плач вашего ребенка при прикосновении к коже вокруг него.Любой из них может сигнализировать об инфекции.

Пуповина — штука забавная, но очень часто она просто высыхает и отваливается — и не задумываешься. Но если развивается незначительное состояние, такое как пупочная гранулема, лечение часто бывает быстрым и легким, которое проводится в кабинете вашего педиатра. Как только он заживет, у вашей милой будет самая милая, самая привлекательная для поцелуев инни или аути.

Пупочные грыжи | Университетские больницы

Чего ожидать

Хирургия и последующее наблюдение

Ожидайте возвращения домой после операции, поэтому запланируйте, чтобы друг/член семьи отвез вас домой.

Диета

Лечение вашей паховой грыжи требует , а не каких-либо особых диетических ограничений после операции.

Некоторые пациенты могут обнаружить, что их аппетит плохой в течение недели или двух после операции. Это нормальный результат хирургического стресса — к вам со временем должен вернуться аппетит. Если вы обнаружите, что вас постоянно тошнит или вы не можете принимать жидкости, свяжитесь с нашим офисом и сообщите нам об этом.

Уход за ранами

Принимать душ можно примерно через 36 часов после операции.Если у вас есть повязка на разрезах, снимите ее перед тем, как принять душ.

Вы можете увидеть маленькие кусочки ленты (так называемые стерильные полоски), прикрепленные непосредственно к вашей коже. Можно намочить эти маленькие ленты в душе. Тейпы начнут отслаиваться на концах через 7-10 дней после операции — на этом этапе они сделали свою работу, и вы можете снять их до конца, если хотите. Вы должны иметь , а не , когда придете на послеоперационный визит.

Никаких бань, бассейнов или джакузи в течение двух недель после операции.

Мы стараемся закрыть ваши разрезы, чтобы оставить как можно меньший шрам. Не смазывайте разрезы , а не мазью или другими лекарствами – это не улучшит их «заживление».

Деятельность

Нет медицинских или физических ограничений активности после операции . Это означает, что можно ходить, подниматься по лестнице, поднимать тяжести, заниматься сексом, косить газон или заниматься спортом, если это не причиняет боли.На самом деле, скорейшее возвращение к нормальной деятельности, скорее всего, ускорит ваше выздоровление. Тем не менее, если вам это не нравится, не делайте этого . Успокойтесь, и пусть боль будет вашим проводником!

Вы также можете чувствовать себя легко утомленным и «вымотанным» в течение недели или двух после операции. Эти факторы наложат некоторые ограничения на вашу деятельность, но вы , а не причините какой-либо вред, даже если испытаете некоторую болезненность .

Работа

Все возвращаются на работу в разное время.Если хотите, можете сразу вернуться к работе; однако, как примерный ориентир, большинство людей берут отпуск как минимум на 1-2 недели, прежде чем вернуться к работе. Если вам нужна конкретная документация для вашей работы, позвоните в офис.

Вождение

Как правило, вы сможете водить машину, если вам не нужны наркотические (рецептурные) обезболивающие в течение двух дней .

Испражнения

Первая дефекация может произойти через 1–5 дней после операции — если у вас нет тошноты или болей в животе, этот вариант допустим.Помните, что очень часто из прямой кишки выходит намного больше газа, чем раньше, потому что вы не сможете по-настоящему отрыгнуть. Некоторые пациенты также обнаруживают диарею или «жидкий кишечник» в первые дни после пластики грыжи — в подавляющем большинстве случаев функция кишечника со временем нормализуется. Запор также может быть обычным явлением из-за обезболивающих. Мы рекомендуем принимать магнезиальное молоко (2 столовые ложки два раза в день) одновременно с обезболивающими, чтобы избежать запоров.

Серома

Некоторые пациенты обнаруживают, что их грыжа «возвращается» сразу после операции. Не беспокойтесь – это нормальное ощущение и/или внешний вид. Ушивание грыжи , а не не удалось – место, где было содержимое грыжи, иногда может заполниться послеоперационной жидкостью – эта жидкость является нормальным результатом операции и обычно рассасывается организмом через несколько недель.

Когда звонить

Позвоните в кабинет хирурга, если произойдет одно из следующих событий:

  • Лихорадка до 100.4 или выше
  • Озноб
  • Боль, усиливающаяся со временем
  • Покраснение, повышение температуры или выделение гноя из мест разрезов
  • Постоянная тошнота или неспособность принимать жидкости

Хирургические инфекции | Медицина Джона Хопкинса

Ваша кожа является естественным барьером против инфекции. Даже при наличии многих мер предосторожности и протоколов для предотвращения инфекции любая операция, вызывающая повреждение кожи, может привести к инфекции.Врачи называют эти инфекции инфекциями области хирургического вмешательства (ИОХВ), потому что они возникают на той части тела, где была проведена операция. Если у вас есть хирургическое вмешательство, вероятность развития ИОХВ составляет от 1% до 3%.

Типы инфекций области хирургического вмешательства

ИОХВ обычно возникает в течение 30 дней после операции. CDC описывает 3 типа инфекций области хирургического вмешательства:

  • Поверхностная инцизионная SSI. Эта инфекция возникает только в области кожи, где был сделан разрез.

  • Глубокая инцизионная SSI. Эта инфекция возникает под областью разреза в мышцах и тканях, окружающих мышцы.

  • Орган или пространство SSI. Этот тип инфекции может быть в любой области тела, кроме кожи, мышц и окружающих тканей, которые были вовлечены в операцию. Это включает в себя орган тела или пространство между органами.

Признаки и симптомы инфекции области хирургического вмешательства

Любая ИОХВ может вызвать покраснение, замедленное заживление, лихорадку, боль, болезненность, повышение температуры или отек.Вот другие признаки и симптомы определенных типов ИОХВ:

  • При поверхностной ИОХВ может образовываться гной из раны. Образцы гноя можно выращивать в культуре, чтобы выяснить типы микробов, вызывающих инфекцию.

  • Глубокая ИОХВ также может привести к образованию гноя. Место раны может открыться само по себе, или хирург может снова открыть рану и обнаружить гной внутри раны.

  • При хирургическом вмешательстве органа или пространства может быть выявлено выделение гноя из дренажа, введенного через кожу в полость или орган тела.Скопление гноя, называемое абсцессом, представляет собой замкнутую область гноя и распадающейся ткани, окруженную воспалением. Абсцесс можно увидеть при повторном вскрытии хирургом раны или при специальных рентгенологических исследованиях.

Причины и факторы риска инфекций области хирургического вмешательства

Инфекции после операции вызываются микробами. Наиболее распространенные из них включают бактерии Staphylococcus , Streptococcus и Pseudomonas . Микробы могут инфицировать хирургическую рану через различные формы контакта, например, от прикосновения зараженного лица, осуществляющего уход, или хирургического инструмента, через микробы в воздухе или через микробы, которые уже находятся на вашем теле или в нем, а затем распространяются в рану.

Степень риска ИОХВ связана с типом операционной раны. Хирургические раны можно классифицировать следующим образом:

  • Чистые раны. Они не воспалены и не контаминированы и не связаны с операцией на внутреннем органе.

  • Чисто инфицированные раны. У них нет признаков инфекции во время операции, но они связаны с операцией на внутреннем органе.

  • Загрязненные раны.К ним относятся операции на внутреннем органе с вытеканием содержимого из органа в рану.

  • Грязные раны. Это раны, в которых на момент операции присутствует известная инфекция.

Другие факторы риска ИОХВ:

  • Операция продолжительностью более 2 часов

  • Наличие других медицинских проблем или заболеваний

  • Быть пожилым человеком

  • Лишний вес

  • Курение

  • Наличие рака

  • Слабая иммунная система

  • Диабет

  • Неотложная операция

  • Операция на органах брюшной полости

Предотвращение инфекций в области хирургического вмешательства

Если вам предстоит операция, спросите своего врача, что вы можете сделать, чтобы снизить риск инфекции в области хирургического вмешательства.Важно бросить курить перед операцией и рассказать хирургической бригаде о своей истории болезни, особенно если у вас диабет или другое хроническое заболевание. Кроме того, избегайте бритья участка кожи, через который хирург планирует оперировать.

Какими бы любопытными они ни были, близкие не должны прикасаться к вашей ране или месту операции. Внимательно следуйте инструкциям своего врача по уходу за раной после операции. Позвоните своему врачу, если у вас появится лихорадка или гной, покраснение, жар, боль или болезненность вблизи раны или любые другие признаки или симптомы инфекции области хирургического вмешательства.

Лечение инфекций в области хирургического вмешательства

Большинство ИОХВ можно лечить антибиотиками. Иногда для лечения ИОХВ могут потребоваться дополнительные операции или процедуры. Во время выздоровления убедитесь, что друзья и члены семьи моют руки до и после того, как войдут в вашу комнату. Убедитесь, что врачи, медсестры и другие лица, осуществляющие уход, тоже моют руки.

незаживающих хирургических ран | Temple Health

Что такое незаживающие хирургические раны?

Незаживающая операционная рана может возникнуть после операции, когда рана, вызванная разрезом, не заживает должным образом.Обычно это вызвано инфекцией — редким, но серьезным осложнением.

Причины плохого заживления ран зависят от вида и места проведения процедуры, состояния здоровья и других факторов. Эти вещи могут повысить риск осложнений:

  • Бактерии на коже или других частях тела
  • Ослабленная иммунная система
  • Заболевания, такие как диабет
  • Привычки образа жизни, такие как курение или неправильное питание
  • Пожилой возраст
  • Лишний вес
  • Неотложная хирургия
  • Операции на брюшной полости или кишечнике (бактериальная инфекция)
  • Операции продолжительностью более двух часов

Симптомы

Симптомы незаживающей операционной раны зависят от ее локализации и типа.Ваш хирург и команда по уходу будут знать нормальный процесс заживления и временные рамки. Они контролируют раны на наличие признаков инфекции или других осложнений.

Симптомы инфекции включают:

  • Лихорадка
  • Гной или выделения
  • Усиление боли и покраснение
  • Рана горячая
  • Зловонный запах
  • Глубокий или высохший внешний вид

Варианты лечения

Ваш врач осмотрит рану и рассмотрит ваши симптомы.Осложнения обычно возникают в течение 30 дней. Сообщайте о любых симптомах своему врачу или поставщику медицинских услуг.

Оценка раны может включать забор жидкости из раны. Лечение ран может включать:

  • Чистка кожи
  • Промывание раны (осторожное распыление водного раствора)
  • Частая смена хирургических повязок и осмотр ран
  • Лекарство для предотвращения инфекции и облегчения боли
  • Хирургическая обработка (удаление поврежденных или мертвых тканей)
  • Вакуумное закрытие (слив крови или жидкости)
  • Гипербарическая оксигенация (доставляет к ране большое количество кислорода)
  • Пересадка кожи или тканей
  • Физиотерапия и реабилитация
  • Обучение и консультации по уходу за ранами, диете и питанию, а также уходу на дому
  • Социальные услуги, включая ресурсы и поддержку для преодоления хронических заболеваний

Незаживающие хирургические раны тщательно контролируются на каждом этапе.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.