Бифидум для новорожденных инструкция по применению: Бифидумбактерин сухой лиофилизат 5 доз, показания и противопоказания, состав и дозировка — АптекаМос

Содержание

противопоказания, побочное действие, дозировки, состав – в справочнике лекарственных средств

Бифидумбактерин сухой при кишечных заболеваниях применяют перорально, а в акушерско-гинекологической практике интравагинально.

С флакона удаляют металлический колпачок и резиновую пробку. Содержимое флакона растворяют кипяченой водой комнатной температуры из расчета 1 чайная ложка на 1 дозу лекарственного средства.

Способ растворения:

  • в стакан наливают требуемое количество чайных ложек воды (в соответствии с числом доз, указанных на этикетке тары), затем из стакана переносят во флакон небольшое количество воды для растворения сухой массы. После растворения содержимое флакона переносят в тот же стакан и перемешивают.

Одна чайная ложка растворенного таким образом лекарственного средства составляет одну дозу. Необходимое количество доз (соответственно чайных ложек) выпивают за 20-30 мин до еды. Грудным детям лекарственное средство можно давать непосредственно перед кормлением.

При кишечных заболеваниях длительность курса лечения бифидумбактерином определяется тяжестью клинических проявлений, возрастом больного и составляет 2-4 недели, а в отдельных случаях до 3-х месяцев. С профилактической целью назначают по 5 доз 1-2 раза/сут в течение 1-2 недель.

Новорожденным группы «риска» целесообразно начинать применение лекарственного средства в родильном отделении с первых суток жизни до выписки по 1-2 дозы на прием 3 раза/сут.

При кишечных заболеваниях детям первого полугодия жизни лекарственное средство назначают по 3 дозы на прием 3 раза/сут. Детям второго полугодия и старше — по 5 доз 2 раза/сут.

При возникновении у детей нарушений функций ЖКТ и угрозы язвенно-некротического энтероколита назначают до 10 доз в сут.

При острых хронических воспалительных заболеваниях тонкого и толстого кишечника, колитах и энтероколитах у взрослых рекомендуется по 5 доз 2-3 раза/сут.

В комплексной терапии с антибиотиками и другими антибактериальными препаратами рекомендуется:

  • детям до 1 года по 5 доз 2-3 раза/сут, детям старше 1 года по 5 доз 3-4 раза/сут, взрослым по 10 доз 2-3 раза/сут.

Для интравагинального введения бифидумбактерин растворяют выше указанным способом. Полученной взвесью лекарственного средства пропитывают стерильный тампон, который вводят интравагинально и оставляют на 2-3 ч.

При воспалительных гинекологических заболеваниях и предродовой подготовке беременных группы «риска» бифидумбактерин назначают по 5-10 доз 1 раз/сут в течение 5-8 дней под контролем восстановления чистоты вагинального секрета до I-II степени и исчезновения клинических симптомов воспаления. При необходимости курс лечения бифидумбактерином можно повторить.

формы выпуска и дозировка, показания к приему, инструкция по применению

Уникальное средство бифидумбактерин для новорождённых — настоящая панацея для решения начинающихся проблем с животиком. Непременным условием воспитания здоровых детей является знание родителями природы и проявлений болезненных состояний своего малыша, умение своевременно распознать эти проявления, приходить на помощь и, наконец, просто не навредить ребёнку в искреннем стремлении помочь ему.

Особенности кишечника грудного ребёнка

К сожалению, многие заболевания детей, особенно в первые годы жизни, обуславливаются образом питания. Ребёнок появляется на этот свет беспомощным и незрелым, и пройдёт много лет, прежде чем процессы в организме младенца установятся окончательно. Желудочно-кишечный тракт не будет сформирован должным образом, если в младенчестве отсутствовало естественное грудное вскармливание.

Кишечный тракт у новорождённых стерилен, но практически с первых дней жизни начинается заселение его микроорганизмами. При нормальной лактации и вскармливании ребёнка грудью в кишечнике преобладает бифидум-флора и в малых количествах содержатся кишечная палочка, ацидофильные и другие бактерии. По мере изменения характера питания микрофлора наполняется кишечными палочками, она преобладает у детей, находящихся на смешанном или искусственном вскармливании.

Нормальная кишечная флора — это:

  • отлаженная пищеварительная функция;
  • своевременные синтетические процессы;
  • особая защита.

В рамках первой функции происходит расщепление полученной пищи для дальнейшего ее усвоения организмом. Для второй характерно осуществление синтеза витаминов группы В, РР, К и биотина. Синтетическая функция наиболее изменчива и уязвима, так как под влиянием неблагоприятных факторов может снижаться либо полностью прекратиться. Также кишечная микрофлора является своеобразным барьером для болезнетворных бактерий.

При дефиците бифидобактерий происходит угнетение иммунобиологических сил организма, так как нарушаются процесс пищеварения, всасывания и все виды обмена. В частности, снижается усвоение кальция, витамина К, страдает витаминосинтезирующая функция кишечной микрофлоры.

Лекарство для новорождённых

Одной из наиболее распространённых проблем в первый год жизни ребенка являются кишечные колики, приносящие огромный дискомфорт как самому малышу, так и молодым родителям. Помимо колик, неокрепший детский кишечник подвержен вздутиям, повышенному газообразованию, нарушениям стула. Обязательным пунктом в начале лечения является консультация детского врача. Одним из рекомендуемых специалистами препаратов является бифидумбактерин.

В число наиболее распространённых проблем входят:

  1. Вздутие.
  2. Кишечная колика.
  3. Понижение аппетита.
  4. Отсутствие набора веса.
  5. Плохой прерывающийся сон.
  6. Срыгивания, превышающие норму.

Безусловно, организм новорождённого со временем сам справляется с этими недугами, полезные бактерии возьмут верх, установится равновесие, и пищеварительные процессы придут в норму. Вместе с тем малыш успокоится и забудет о болях. Среди педиатров закрепилось мнение о том, что проблемы заселения микрофлоры младенцев уходят после первых трёх месяцев жизни. Однако каждый организм индивидуален, указанные сроки могут как сократиться, так и увеличиться. При кормлении грудью кишечник ребёнка быстрее и легче проходит адаптацию, при смешанном или полностью искусственном вскармливании эти процессы занимают более длительный период.

В группе риска чаще всего находятся:

  • недоношенные дети;
  • младенцы с недобором нормального веса;
  • малыши, получившие родовую травму;
  • аллергики;
  • младенцы, мамы которых были подвержены гестозу беременных либо страдают хроническими заболеваниями;
  • дети, появившиеся на свет при помощи кесарева сечения.

Ошибочно ждать, когда дисбактериоз пройдёт сам собой. В первую очередь необходимо обратиться к врачу и получить назначения для проведения терапевтических мер. Если обнаружен дефицит полезных бактерий, педиатры рекомендуют применять бифидумбактерин для новорождённых. Это комплексный препарат, который благотворно влияет на микрофлору кишечника, если его правильно принимать. С помощью этого лекарства можно восполнить дефицит полезных бактерий. Одновременно бифидум — это иммуномодулирующий препарат.

Показаниями к его применению являются:

  1. Профилактика и лечение различных дисбактериозов кишечника.
  2. Профилактика больничных инфекций и дисбиозов.
  3. Предупреждение нарушений кишечной флоры до и после хирургических процедур.
  4. Перевод на искусственное или смешанное вскармливание.
  5. Симптомы малокровия, рахита, аллергии, диатеза.
  6. Воспалительные заболевания, болезни, сопровождающиеся гнойно-септическими процессами.
  7. Острые инфекции кишечника вследствие жизнедеятельности ротовирусных бактерий, сальмонелл, шигелл.
  8. Пищевые отравления, размножение стафилококковых бактерий.
  9. Хронические нарушения стула, в том числе запоры или диареи, возникшие на фоне антибиотикотерапии.
  10. Нарушение всасывания питательных веществ, витаминов и микроэлементов в тонком кишечнике.

Как и любой другой лекарственный препарат, назначаемый лечащим врачом, бифидумбактерин обладает рядом ограничений к применению и лечению нарушений кишечной микрофлоры.

Противопоказания к приему бифидумбактерина:

  • Индивидуальная непереносимость.
  • Аллергическая реакция.
  • Непереносимость лактозы.

Лактазная недостаточность — это отторжение лактозы при усвоении питательных веществ. Препарат предлагает различные формы выпуска для решения этой проблемы.

Бифидумбактерин обладает иммуномодулирующим эффектом и содержит бифидобактерии, которые находятся в высушенном состоянии и при этом сохраняют свою активность. Такой эффект достигается за счёт лиофилизации, такого метода бережного высушивания, при котором исходный препарат сначала замораживается, а потом помещается в вакуумную среду, где и происходит сублимация растворителя. Это способствует сохранению дисперсной фазы исходного продукта.

Правила приёма бифидумбактерина

Указанное лекарство имеет несколько форм, которые можно приобрести в аптечных сетях. Непосредственно для грудничков существует бифидумбактерин форте. Помимо него, есть препарат в ампулах, в небольших стеклянных флаконах, в виде порошка, таблеток и свечей. Дозировка разная, в зависимости от лекарственной формы, рассчитывается исходя из индивидуальных показателей больного.

Препарат бифидумбактерин в ампулах инструкция для новорождённых предписывает употреблять в разбавленном виде, в лечебных целях назначается по 5 доз два или три раза в сутки. Исходя из того, что содержимое одной ампулы эквивалентно пяти дозам, на одну приходится кратное количество чайных ложек жидкости — молока, кипячёной воды, готовой смеси, затем готовый препарат разделяется на 2−3 приёма.

Хранить сухой препарат необходимо в сухом тёмном месте при температуре не выше 10 градусов около десяти дней. Хранение разведённого готового продукта недопустимо, употребить его необходимо в течение нескольких часов после разведения.

В отношении бифидумбактерина инструкция по применению для грудничков предписывает приём за тридцать минут до кормления. В случае терапии при дисбактериозе принимать лекарство нужно три раза за один день. В среднем курс лечения длится не более 21 дня, повторять его нужно не ранее чем через тридцать дней. Длительность приёма препарата рассчитывается исходя из состояния микрофлоры кишечника малыша.

Результаты терапии видны уже после трёх дней приёма. Разводить сухое лекарство удобнее всего в чайной ложке, условно разделив исходный препарат на три порции, отдельно растворять одну дозу на приём. Неразведённый препарат в открытом флаконе можно хранить в холодильнике не более суток.

Температура жидкости для разведения одной порции лекарства должна быть не выше сорока градусов, в противном случае полезные бактерии погибнут.

Расчёт дозы для грудничков

Согласно прилагаемой инструкция по применению бифидумбактерина, на один флакон неразведенного сухого вещества приходится пять доз.

Таким образом, получается две или три порции сухого препарата, каждую из которых отдельно необходимо размещать в пяти миллилитрах жидкости, что эквивалентно объёму чайной ложки. Так, в одной чайной ложке будет содержаться порция необходимая для однократного приёма.

В составе лекарственного препарата содержится масса живых бифидобактерий в количестве, равном 10*7 в ампулах и флаконах и 10*8 в форме порошка.

Бифидум является пробиотиком и содержит живые активные бифидобактерии в различных видах. Различают препарат с приставкой форте и без нее. В бифидумбактерине форте полезные микроорганизмы иммобилизованы на косточковом активированном угле, в других же препаратах используют защитную сахарно-желатиново-молочную среду для выращивания. Форму приема препарата и дозировку устанавливает лечащий врач.

Отзывы пациентов

Как давать бифидумбактерин грудничку, понять не могла. Методом проб и ошибок пошла, потом мама все объяснила. Препарат принимали по схеме, сыночек счастлив, животик больше не мучает, я выспалась… Да, ещё, пришла в аптеку, говорю, что нужно бифидумбактерин бэби, а провизор отвечает, что нет такого, только бифиформ бэби, а бифидумбактерин есть обычный и есть форте, не перепутайте.

Виктория Г.

Инструкция по применению бифидумбактерина во флаконах не совсем доступно изложена. Проще говоря, берётся флакон, делится на три приёма, каждая порция разводится отдельно. Сухой ставится в холодильник до следующего приёма, разбавленный сразу нужно выпить. Получается, что одного флакона хватает на 2−3 раза. Ребёнку помог хорошо, уже на вторые сутки стал меньше капризничать после кормлений, ночью сон намного спокойнее, перестала бояться ночных пробуждений, чтобы покушать. В целом лекарство рекомендуют и многие педиатры, и знакомые мамочки очень хвалят. Проверила лично, даже сама пробовала, все отлично.

Анна Зато

Согласно отзывам, препарат бифидумбактерин для новорождённых прекрасно справится с проблемами пищеварения неокрепшего кишечника и избавит молодых мам от истерик и капризов малышей, поможет решить вопрос с нарушениями сна из-за колик и вздутий, облегчит ночные кормления. Он содержит миллионы полезных бактерий, которые восстанавливают и улучшают работу желудочно-кишечного тракта. Многообразие форм выпуска предоставляет большой выбор способов употребления препарата, удобных для совсем юных пациентов.

Поможет в преодолении проблем после приёма антибиотиков и эффективно устранит проявления аллергии на фоне приёма лекарства или ввода нового прокорма. Работоспособность ЖКТ и поддержание его здорового состояния — это первый кирпичик в построении крепкого и сильного организма, залог хорошего самочувствия и прекрасного настроения малыша.

пробиотических капель для младенцев | Выращивайте + процветайте из Culturelle®

Почему рекомендую
  • Прочная основа для здорового развития младенцев *
  • Способствует росту бифидобактерий, бактерий, обычно обнаруживаемых в грудном молоке *
  • Помогает развивать здоровую пищеварительную систему для лучшего усвоения питательных веществ *

Описание

Безопасный и нежный Culturelle ® Baby Grow + Thrive Drops был разработан для поддержания правильного желудочно-кишечного баланса, чтобы помочь заложить прочную основу у младенцев и помочь поддержать естественную защиту, пищеварение, усвоение питательных веществ и здоровье костей. * Пробиотические капли также дополняют полезные бактерии, содержащиеся в грудном молоке. *

Эффективность

По мере того, как ребенок растет и развивается, основные бактерии, с которыми он рождается, естественным образом истощаются. Пробиотики в каплях Culturelle ® Baby Grow + Thrive Drops, Lactobacillus rhamnosus GG (LGG ® ) и Bifidobacterium animalis subsp. lactis (BB-12 ™), стимулируют рост бифидобактерий и других лактобактерий, помогая поддерживать баланс кишечной микробиоты младенца, способствуя развитию здоровой иммунной и пищеварительной систем.* LGG ® и BB-12 ™ сочетаются с витамином D, важной добавкой для детей, находящихся на грудном вскармливании, и помогающих вашему ребенку строить крепкие кости. *

Капли
Culturelle® Baby Grow + Thrive Drops обладают следующими преимуществами:
  • Предоставляет младенцам два наиболее изученных пробиотика, Lactobacillus rhamnosus (LGG ® ) и Bifidobacterium (BB-12), чтобы способствовать развитию здоровой микробиоты
  • Содержит 2 миллиарда КОЕ LGG ® и 500 миллионов КОЕ BB12
  • Обеспечивает рекомендованное Американской ассоциацией педиатрии ежедневное потребление витамина D для обеспечения здорового развития костей 1
  • Простые в использовании капли или пакеты, которые можно добавлять прямо в грудное молоко, смеси, напитки или еду
Усовершенствованная технология суспензии для обеспечения дозировки и эффективности

Запатентованная технология:

  • Гарантирует КОЕ на дозу и точное дозирование
  • Не требует сильного встряхивания, которое может длиться несколько минут
  • Облегчает дозирование с помощью отдельной капельницы

Руководство по эксплуатации

Указания для детей до 1 года:

  • Используйте 5 капель один раз в день.Выдавайте прямо в рот ребенка, из бутылочки или во время грудного вскармливания.
  • Перед употреблением взболтать.
  • Перед первым использованием замените колпачок на пипетку и выбросьте оригинальный колпачок. Промывать капельницу между использованием не рекомендуется.
  • После открытия использовать в течение 60 дней.

Инструкции по хранению: Храните Culturelle ® в прохладном, сухом месте вдали от прямых солнечных лучей.

Контроль вскрытия: не использовать, если кажется, что бутылка или пипетка открыты.

Для детей старше 1 года: принять Culturelle ® Baby Grow + Thrive Packets, как указано на упаковке.

ВНИМАНИЕ: ХРАНИТЕ В НЕДОСТУПНОМ ДЛЯ ДЕТЕЙ. Сообщите медицинскому работнику, прежде чем начинать принимать какие-либо диетические добавки, особенно при наличии известного состояния с ослабленным иммунитетом. Если у вашего ребенка развивается аллергическая реакция, такая как сыпь, зуд, хрипы или крапивница, прекратите использование и обратитесь к врачу.

По вопросам, проблемам или сообщению о нежелательном явлении звоните по телефону (800) 722-3476.

Важная информация о безопасности
Используйте с осторожностью у пациентов с известными состояниями с ослабленным иммунитетом.

Посмотреть факты о дополнении ОБРАЗЦЫ Ресурсы Emerging Science + пробиотическое образование

штаммов бифидобактерий в кишечнике новорожденных происходят от их матерей

Biosci Microbiota Food Health. 2018; 37 (4): 79–85.

Hiroshi MAKINO

1 Yakult Central Institute, 5-11 Izumi, Kunitachi-shi, Tokyo 186-8650, Japan

1 Yakult Central Institute, 5-11 Izumi, Kunitachi-shi, Tokyo 186-8650 , Япония

Поступила 17.05.2018 г .; Принята в печать 28 июля 2018 г.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Считается, что желудочно-кишечный тракт быстро заселяется бактериями сразу после рождения. Источник этих кишечных микробов представляет постоянный интерес, потому что все больше данных свидетельствует о том, что состав начальной кишечной бактериальной колонизации сильно влияет на здоровье. В частности, источник бифидобактерий получил заметную внимание, потому что предполагается, что эти бактерии играют решающую роль в защите от восприимчивости к различным заболеваниям в более позднем возрасте.Однако источник этих микробов осталось неясным. Недавно было подтверждено, что матери передают свои уникальные штаммы бифидобактерий своим детям вскоре после рождения. Передаваемые штаммы преобладают во время в раннем младенчестве, что позволяет предположить, что кишечные бифидобактерии матери являются важным источником микробиоты кишечника младенца. Соответственно, поддержание здоровой, сбалансированной микробиоты кишечника во время беременность оказывает важное положительное влияние на микробиоту кишечника новорожденного.

Ключевые слова: бифидобактерии, грудное молоко, младенчество, кишечная микробиота, передача от матери ребенку

ВВЕДЕНИЕ

Кишечная микробиота представляет собой сложную экосистему с обширной метаболической активностью; он насчитывает более 1000 видов бактерий и составляет от 10 11 до 10 12 бактериальных клеток на грамм кала [1, 2].Считается, что эти виды бактерий играют роль в развитии их хозяина. состояния здоровья и болезней путем защиты от патогенов, обработки питательных веществ, регулирования накопления жира и стимуляции ангиогенеза [3,4,5,6]. Считается, что состав кишечной микробиоты взрослого человека стабильна в течение длительного периода, хотя может заметно различаться у разных людей [7]. Напротив, желудочно-кишечный тракт у младенцев быстро колонизируется. с бактериями сразу после рождения [8,9,10]; состав кишечная микробиота сравнительно проста во время грудного вскармливания, усложняется после начала отлучения от груди и остается стабильной в пожилом возрасте [11]. Накапливающиеся данные свидетельствуют о том, что начальная колонизация кишечника обеспечивает мощный микробный стимул, который приводит к глубоким изменениям в развитии иммунитета кишечника и слизистой оболочки. система [12, 13]. Следовательно, считается, что микробная колонизация в младенчестве имеет важное значение на протяжении всей жизни. хорошее здоровье.

Бифидобактерии — одни из самых важных и полезных бактерий в кишечнике не только для взрослых, но и для младенцев. Как правило, преобладающими микроорганизмами становятся бифидобактерии. в кишечнике в течение недели после рождения и остаются доминирующими до отнятия от груди [11].Более того, бифидобактерии, по-видимому, играют решающую роль в защищая хозяина от патогенных бактерий, помогая активизировать иммунную систему слизистых оболочек и, следовательно, защищая от предрасположенности к различным заболеваниям в более позднем возрасте [14].

Об источнике этих кишечных бактерий имеется мало информации. Виды Bifidobacterium классифицируются как типичные анаэробные бактерии [15], и была выдвинута гипотеза, что кишечные микробы младенца приобретаются во время прохождения через родовые пути [16].В нескольких исследованиях сообщалось о выделении видов Bifidobacterium , включая B. adolescentis , B. bifidum , B. breve , B. catenulatum и B. longum — из вагинальных мазков [17, 18]. Однако мало известно о ростовой среде в родовых путях беременных и составе микробиоты влагалища. Таким образом, происхождение этих кишечных микробов продолжает вызывать опасения. внимание.

Несколько недавних исследований с использованием анализов на уровне штаммов подтвердили, что матери передают свои уникальные штаммы бифидобактерий своим младенцам вскоре после рождения [19,20,21].В этом обзоре я суммирую те исследования, в которых изучались отношения между кишечной микробиотой матери, кишечной микробиотой младенца и грудным молоком человека.

МАТЕРИНСКИЕ КИШЕЧНЫЕ БИФИДОБАКТЕРИИ И КИШЕЧНЫЕ БИФИДОБАКТЕРИИ МЛАДЕНЦА

Несколько исследований с использованием молекулярно-биологических методов подтвердили возможность передачи кишечной микробиоты от матери к младенцу [18, 22,23,24,25]. В молекулярные методы, используемые в этих исследованиях, такие как количественная ПЦР в реальном времени (КПЦР), эффективны для идентификации микроорганизмов на уровне видов, но не позволяют проводить сравнения на штамме. уровень.Более того, анализы случайно амплифицированной полиморфной ДНК (RAPD) и гель-электрофореза в импульсном поле (PFGE) были подвергнуты сомнению как высокочувствительные методы типирования на уровне штаммов из-за факторы в их базовых конструкциях, которые потенциально могут создавать паразитные полосы [26, 27]. Следовательно, далее, более требуются высокочувствительные анализы, чтобы подтвердить, что, когда и каким образом бактерии передаются от матери или из любых других источников окружающей среды к младенцу.

Макино и др. исследовали взаимосвязь между материнскими кишечными бифидобактериями и младенческими кишечными бифидобактериями с помощью мультилокусного последовательного типирования (MLST) [19, 20].MLST использует полиморфизмы последовательностей набора из семи генов в геноме для генерации данных, которые можно использовать для различать бактериальные штаммы [28]. Этот метод дает воспроизводимые данные с высоким разрешением и, следовательно, подходит для обоих видов. идентификация и типирование штаммов [29].

Штаммы бифидобактерий были выделены из образцов фекалий, взятых у 17 здоровых пар мать-младенец (естественные роды, 12 пар; кесарево сечение, 5 пар), проживающих в Антверпене. (Бельгия) [20].Образцы кала брали у матерей дважды (с интервалом не менее 1 недели) до родов и у младенцев в 0 (меконий), 3, 7, 30, и 90-дневного возраста. Штаммы бифидобактерий были выделены из этих образцов и классифицированы с помощью MLST. Всего было получено 273 изолята бифидобактерий и пять Bifidobacterium видов ( B. adolescentis , B. bifidum , B. catenulatum , B. longum подвиды longum, и B.pseudocatenulatum ) оказались монофилетическими между отдельными парами мать и ребенок. Эти данные подтвердили, что от матери к ребенку происходит передача нескольких видов Bifidobacterium . Монофилетические штаммы от матери к младенцу постоянно выявлялись в образцах фекалий младенцев (). Эти результаты свидетельствуют о том, что преобладающие штаммы в кишечнике беременных женщин были перенесены в кишечник их младенцев, и их количество вскоре увеличилось. рождения, а впоследствии колонизировали младенцев.Эти результаты подтвердили первоначальные исследования, которые предполагали важность передачи бактерий от матери ребенку в колонизации желудочно-кишечный тракт новорожденных [22,23,24,25]. Более того, в нескольких семьях два штамма от разных видов были монофилетическими, что подтверждает, что передача от матери ребенку нескольких Виды Bifidobacterium могут встречаться параллельно в пределах одного семейства. Эти результаты также предполагают, что другие виды комменсальных бактерий также могут передаваться через мать и колонизируют кишечник младенца вскоре после рождения.

Дендрограмма 25 особей B . bifidum штаммов (BIF) (по данным исследования Макино и др. [21]). * Изоляты от обоих членов пары мать-младенец имели один и тот же тип последовательности и кластер. Отметим, что мать № 76 родила двойню (А, Б). Оригинал публикация доступна по адресу https://doi.org/10.1371/journal.pone.0078331.

Монофилетические штаммы Bifidobacterium для матери и ребенка были получены от 11 из 12 младенцев, рожденных естественным путем ().Следует отметить, что монофилетические штаммы Bifidobacterium не наблюдались среди пяти младенцев, рожденных с помощью кесарева сечения, что свидетельствует о передаче инфекции от матери ребенку. эти штаммы встречались только среди младенцев, рожденных естественным путем. Эти результаты предполагают, что способ родоразрешения может повлиять на частоту передачи инфекции от матери ребенку.

Таблица 1.

Обнаружение монофилетических штаммов Bifidobacterium мать – младенец среди 17 пар мать – младенец (по данным исследования Makino et al. [21])

Количество бифидобактерий видов монофилетического штамма анализировали с помощью кПЦР. Среди младенцев, рожденных естественным путем, количество монофилетических штаммов матери и ребенка в кишечнике увеличивалось. в количестве, чтобы стать преобладающим штаммом Bifidobacterium в течение 3 дней после рождения. Напротив, среди младенцев, рожденных посредством кесарева сечения, общее количество бифидобактерий оставались значительно ниже, чем у младенцев, рожденных естественным путем, до 7-дневного возраста. Это открытие предлагает подтверждающее свидетельство того, что колонизация кишечника бифидобактериями начинается. раньше среди младенцев, родившихся через естественные родовые пути, чем среди младенцев, рожденных с помощью кесарева сечения [30].Среди младенцев, рожденных естественным путем, увеличение числа бифидобактерии в течение нескольких дней после рождения могут быть связаны с передачей инфекции от матери ребенку. Более того, учитывая, что монофилетические штаммы мать – младенец не наблюдались в у младенцев, рожденных посредством кесарева сечения, материнские штаммы, вероятно, передавались во время транзита через родовые пути.

Интересно, что не все монофилетические штаммы Bifidobacterium матери и ребенка были изолированы на протяжении всего периода отбора проб.Монофилетический организм матери и ребенка B. bifidum и B. longum subsp. Штаммы longum выделяли из образцов фекалий младенцев в течение 90 дней после рождения. Подсчет бактерий показал, что это были преобладающий вид Bifidobacterium от 3 до 90 дней после рождения (). Напротив, монофилетические штаммы, принадлежащие к B. adolescentis и B. catenulatum , не были обнаружены в образцах фекалий младенцев после 7-дневного возраста.Более того, хотя несколько младенцев, рожденных естественным путем, содержали эти виды в концентрациях до 10 10 клеток / г фекалий, эти виды не доминировали в кишечнике. естественных родов в раннем младенчестве. Эти результаты позволяют предположить, что некоторые виды бифидобактерий преимущественно размножаются и колонизируют кишечник доставляемых через естественных условиях. младенцы.

Подсчет каждого вида Bifidobacterium в кале младенцев в возрасте от 0 до 90 дней (по данным исследования Makino et al. [21]).

* Модель B . Группа catenulatum включает виды B . catenulatum и B . pseudocatenulatum . Оригинальная публикация доступна по адресу https://doi.org/10.1371/journal.pone.0078331.

Все дети в исследовании находились на исключительно грудном вскармливании в течение как минимум 2 месяцев. Широко известно, что грудное молоко содержит множество сложных олигосахаридов (HMO), которые избирательно стимулируют рост конкретных видов бифидобактерий [31, 32].Типичные виды детенышей, такие как B. bifidum и B. longum эффективно используют ОПЗ [33,34,35], тогда как бифидобактерии взрослого типа, такие как B. adolescentis , менее эффективно используют ОПЗ [34, 35]. Таким образом, грудное вскармливание и наличие ОПЗ могут быть ключевыми факторами, объясняющими, почему, несмотря на то, что младенцы приобретают широкий спектр видов бифидобактерий из своих Матери, виды, способные использовать ОПЗ, остаются одними из основных колонизаторов кишечника младенцев.

Несколько исследований показали, что факторы окружающей среды, такие как присутствие медицинского персонала или других младенцев, также могут влиять на состав кишечной микробиоты [36,37,38]. Используя профилирование плазмид, Murono et al. обнаружил, что Госпитальные штаммы Escherichia coli передавались горизонтально среди младенцев [38]. С другой стороны, Makino et al. показали, что ни один из штаммов монофилетических бифидобактерий не был идентифицирован у других младенцев, родившихся в той же больнице, и они не нашли доказательств возникновения горизонтального передача бифидобактерий [20].Более того, образовались монофилетические штаммы матери и ребенка всех пяти видов Bifidobacterium отдельные кластеры для каждой семьи, предполагая, что в каждой семье была своя собственная уникальная группа бифидобактерий, которая передавалась от матери к младенцу. Эта концепция вертикального переноса подкрепляется тем фактом, что штаммы Bifidobacterium от матери, родившей близнецов, были идентифицированы в кишечнике обоих младенцев (), что позволяет предположить, что генетический фон хозяина также может быть ключевым фактором, влияющим на состав кишечной микробиоты.Это согласуется с результаты предыдущих исследований, в которых сообщается, что каждая семья имеет свой собственный набор из видов Lactobacillus и Bifidobacterium [39, 40]. Взятые вместе, эти результаты показывают, что способ доставки и штаммы кишечных бифидобактерий матери являются ключевыми. детерминанты детской бифидобактериальной микробиоты в раннем младенчестве.

КИШЕЧНЫЕ БИФИДОБАКТЕРИИ И БИФИДОБАКТЕРИИ МЛАДЕНЦА В МОЛОКЕ ГРУДИ

Было высказано предположение, что бактерии из кишечника матери человека попадают в молоко через так называемый энтеро-молочный путь и тем самым влияют на колонизацию кишечника младенца [41, 42] .Предыдущие исследования показали, что штаммы B. breve и B. longum subsp. longum , обнаруженные в кале младенцев, идентичны штаммам, обнаруженным в молоке их матери [19, 43, 44]. Эти исследования выдвинули гипотезу о вертикальной передаче штаммов B. breve из материнского молока в младенец, потому что B . breve Штаммы оказались монофилетическими между грудным молоком и кишечником младенца в одних и тех же парах мать-младенец [43, 44]. Однако, учитывая, что подробные данные временных рядов изолятов (включая периоды изоляции) не были опубликованные в этих исследованиях, остается вопрос, присутствовали ли эти общие бифидобактерии временно или они колонизировали кишечник младенца.

Макино и др. исследовали, сохраняется ли совместное использование штаммов бифидобактерий между материнским молоком и кишечником младенца в течение периода грудного вскармливания [21]. В своем исследовании 283 штамма бифидобактерий были выделены из материнского грудного молока и младенческих фекалий, собранных в различные моменты времени у 102 здоровых пары мать – младенец (для грудного молока, один раз перед родами, во время родов [молозиво] и через 7 и 30 дней после родов; для младенческих фекалий, при рождении [меконий] и в возрасте 7 и 30 дней).Изоляты идентифицировали секвенированием гена 16S рРНК и классифицировали с помощью MLST. Штаммы бифидобактерий были получены из грудного молока, собранного через 7 и 30 дней после родов, и в в соответствии с предыдущими исследованиями [45, 46], наиболее часто выделяемый вид Bifidobacterium был B. breve . Напротив, бифидобактерии не были выделены ни из каких образцов грудного молока, взятых перед родами, или из молозива. С другой стороны, изоляция от младенца кал подтверждался иногда еще в день рождения (меконий).

Интересно, что штаммы, принадлежащие к детским бифидобактериям, таким как B. breve , B. longum subsp. longum и B. bifidum виды были единственными видами, которые были идентифицированы как монофилетические между фекалиями младенцев и материнским молоком. Эти штаммы постоянно обнаруживались в материнском молоке и кале младенцев на протяжении всего периода период грудного вскармливания, подтверждая, что они устойчиво распределялись между материнским молоком и кишечником младенца.Более того, монофилетические штаммы были выделены из детских фекалий в моменты времени такие же или более ранние, чем когда они были выделены из грудного молока; ни один из них не был выделен из грудного молока раньше, чем из младенческих фекалий (). Таким образом, эти результаты не подтверждают данные предыдущих отчетов, в которых предполагалось, что бифидобактерии передаются с грудным молоком в кишечник младенца [41, 42, 45, 46]. Фактически результаты исследования Макино и др. предполагают, что штаммы бифидобактерий передаются от младенца к грудному молоку во время грудного вскармливания, учитывая, что инфракрасная фотография показала высокий уровень степень ретроградного притока обратно в молочные протоки во время сосания [47].Вероятность передачи штамма от грудного молока в грудное молоко была значительно выше, чем от грудного молока до грудного [21].

Таблица 2.

Сроки выделения каждого монофилетического штамма Bifidobacterium из материнского грудного молока и младенческих фекалий (по данным исследования Makino et al. al. [22])

Из-за ограничений методологии, использованной Makino et al. (т. Е. Неотъемлемая систематическая ошибка, возникающая в результате используемых методов культивирования), остается неясным, является ли грудное молоко является первым источником микробов для младенцев.Однако результаты подтверждают, что грудное молоко является резервуаром бифидобактерий и что определенные штаммы являются общими для кишечника младенца и грудное молоко при грудном вскармливании.

ЗАКЛЮЧИТЕЛЬНЫЕ ЗАМЕЧАНИЯ И ПЕРСПЕКТИВЫ

Недавние исследования подтвердили, что матери, рожающие естественным путем, передают свои уникальные семейные штаммы бактерий в кишечник своих младенцев в раннем младенчестве. Эти данные свидетельствуют о том, что способ родоразрешения и штаммы кишечных бифидобактерий матери являются ключевыми факторами в определении бифидобактериальной микробиоты младенца в раннем младенчестве.Обслуживание здоровой, сбалансированной кишечной микробиоты во время беременности является важным фактором, который положительно влияет на кишечную микробиоту новорожденного. Такие факторы, как питание у младенцев, могут влияют на сохраняемость семейно-специфических штаммов бифидобактерий у младенцев. Дальнейшие продвинутые исследования на уровне штаммов прояснят, как передача от матери ребенку влияет на другие компоненты кишечной микробиоты в младенчестве и, следовательно, важность материнского кишечника, родовых путей и молока в колонизации кишечника новорожденного.

ПРЕЗЕНТАЦИЯ НА КОНФЕРЕНЦИИ

Содержание этой статьи было удостоено награды Japan Bifidus Foundation за поощрение исследований в 2017 году и было представлено на 22-м ежегодном собрании Japan Bifidus Foundation по вопросам кишечника. Микробиология (31 мая — 1 июня 2018 г., Токио, Япония).

Благодарности

Эта работа была поддержана Центральным институтом Якульт, Европейским исследовательским центром микробиологии Якульт Хонша ESV и Danone Nutricia Research. Я глубоко признателен всем неравнодушным за давая мне возможность получить премию Japan Bifidus Foundation Research Encouragement Award.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Экбург П. Б., Бик Е. М., Бернштейн К. Н., Пурдом Е., Детлефсен Л., Сарджент М., Гилл С. Р., Нельсон К. Е., Релман Д. А.. 2005 г. Разнообразие микробной флоры кишечника человека. Наука 308: 1635–1638. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 2. Qin J, Li R, Raes J, Arumugam M, Burgdorf KS, Manichanh C, Nielsen T., Pons N, Levenez F, Yamada T, Mende DR, Li J, Xu J, Li S, Li D, Cao J, Wang B , Liang H, Zheng H, Xie Y, Tap J, Lepage P, Bertalan M, Batto JM, Hansen T, Le Paslier D, Linneberg A, Nielsen HB, Pelletier E, Renault P, Sicheritz-Ponten T, Turner K, Zhu H, Yu C, Li S, Jian M, Zhou Y, Li Y, Zhang X, Li S, Qin N, Yang H, Wang J, Brunak S, Doré J, Guarner F, Kristiansen K, Pedersen O, Parkhill J, Вайссенбах Дж., Борк П., Эрлих С.Д., Ван Дж., Ван Дж., Консорциум MetaHIT.2010 г. Каталог микробных генов кишечника человека, созданный путем метагеномного секвенирования. Природа 464: 59–65. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 3. Адлерберт I, Линдберг Э., Аберг Н., Хессельмар Б., Заалман Р., Страннегард Иллинойс, Вольд А. 2006 г. Снижение энтеробактериальной и усиленной колонизации стафилококками детского кишечника: эффект гигиены Стиль жизни? Pediatr Res 59: 96–101. [PubMed] [Google Scholar] 4. Фанаро С., Кьеричи Р., Геррини П., Виги В. 2003 г. Микрофлора кишечника в раннем детстве: состав и развитие.Acta Paediatr Suppl 91: 48–55. [PubMed] [Google Scholar] 5. Лей Р. Э., Петерсон Д. А., Гордон Д. И.. 2006 г. Экологические и эволюционные силы, формирующие микробное разнообразие в кишечнике человека. Клетка 124: 837–848. [PubMed] [Google Scholar] 6. Ley RE, Turnbaugh PJ, Klein S, Gordon JI. 2006 г. Микробная экология: микробы кишечника человека, связанные с ожирением. Природа 444: 1022–1023. [PubMed] [Google Scholar] 7. Фейт Дж. Дж., Гурудж Дж. Л., Шарбонно М., Субраманиан С., Зеедорф Х., Гудман А. Л., Клементе Дж. К., Найт Р., Хит А. С., Лейбель Р. Л., Розенбаум М., Гордон Дж. И..2013. Долгосрочная стабильность микробиоты кишечника человека. Наука 341: 1237439. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 8. Gosalbes MJ, Llop S, Vallès Y, Moya A, Ballester F, Francino MP. 2013. Типы микробиоты мекония, в которых преобладают молочнокислые или кишечные бактерии, по-разному связаны с экземой у матери и респираторными заболеваниями. проблемы у младенцев. Clin Exp Allergy 43: 198–211. [PubMed] [Google Scholar] 9. Хименес Э., Марин М.Л., Мартин Р., Одриозола Дж. М., Оливарес М., Хаус Дж., Фернандес Л., Родригес Дж. М..2008 г. Действительно ли меконий от здоровых новорожденных бесплоден? Res Microbiol 159: 187–193. [PubMed] [Google Scholar] 10. Фавье К.Ф., де Вос В.М., Аккерманс А.Д. 2003 г. Развитие бактериальных и бифидобактериальных сообществ в кале новорожденных. Анаэроб 9: 219–229. [PubMed] [Google Scholar] 11. Мицуока Т., Хаякава К., Кимура Н. 1974 г. [Фекальная флора человека. II. Состав бифидобактериальной флоры разных возрастных групп (авторский перевод). Zentralbl Bakteriol [Orig A] 226: 469–478 (на немецком языке).[PubMed] [Google Scholar] 12. Lundell AC, Björnsson V, Ljung A, Ceder M, Johansen S, Lindhagen G, Törnhage CJ, Adlerberth I, Wold AE, Rudin A. 2012 г. Дифференциация памяти младенческих В-клеток и ранняя бактериальная колонизация кишечника. J Immunol 188: 4315–4322. [PubMed] [Google Scholar] 13. Olszak T, An D, Zeissig S, Vera MP, Richter J, Franke A, Glickman JN, Siebert R, Baron RM, Kasper DL, Blumberg RS. 2012 г. Воздействие микробов в молодом возрасте оказывает стойкое влияние на функцию естественных Т-клеток-киллеров. Наука 336: 489–493.[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 14. Turroni F, Ribbera A, Foroni E, van Sinderen D, Ventura M. 2008 г. Микробиота кишечника человека и бифидобактерии: от состава к функциональности. Антони ван Левенгук 94: 35–50. [PubMed] [Google Scholar] 15. Таннок GW. 1999 г. Идентификация лактобацилл и бифидобактерий. Curr Issues Mol Biol 1: 53–64. [PubMed] [Google Scholar] 16. Иноуэ Р., Ушида К. 2003 г. Вертикальная и горизонтальная передача кишечных комменсальных бактерий на модели крыс.FEMS Microbiol Экол 46: 213–219. [PubMed] [Google Scholar] 17. Verhelst R, Verstraelen H, Claeys G, Verschraegen G, Van Simaey L, De Ganck C, De Backer E, Temmerman M, Vaneechoutte M. 2005 г. Сравнение окрашивания по Граму и посева для характеристики микрофлоры влагалища: определение отдельной степени, которая напоминает микрофлора I степени и пересмотренная классификация микрофлоры I степени. BMC Microbiol 5: 61 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 18. Миками К., Такахаси Х., Кимура М., Исодзаки М., Изути К., Сибата Р., Судо Н., Мацумото Х., Кога Ю.2009 г. Влияние материнских бифидобактерий на создание бифидобактерий, колонизирующих кишечник у младенцев. Педиатр Res 65: 669–674. [PubMed] [Google Scholar] 19. Макино Х., Кусиро А., Исикава Э., Муйларт Д., Кубота Х., Сакаи Т., Оиси К., Мартин Р., Бен Амор К., Узир Р., Кнол Дж., Танака Р. 2011 г. Передача кишечника Bifidobacterium longum subsp. longum штаммов от матери к младенцу, определено с помощью типирования мультилокусного секвенирования и полиморфизма длин амплифицированных фрагментов.Appl Environ Microbiol 77: 6788–6793. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 20. Макино Х., Кусиро А., Исикава Э., Кубота Х., Гавад А., Сакаи Т., Оиси К., Мартин Р., Бен-Амор К., Кнол Дж., Танака Р. 2013. Передача штаммов кишечных бифидобактерий от матери ребенку влияет на раннее развитие родов через естественные родовые пути. микробиота. PLoS One 8: e78331. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 21. Макино Х., Мартин Р., Исикава Е., Гавад А., Кубота Х., Сакаи Т., Оиси К., Танака Р., Бен-Амор К., Кнол Дж., Кусиро А.2015 г. Мультилокусное типирование штаммов бифидобактерий из фекалий младенцев и грудного молока: устойчиво ли распространяются бифидобактерии во время кормления грудью? Benef Microbes 6: 563–572. [PubMed] [Google Scholar] 22. Кидзима А., Умекава Н., Ёсида М., Осава Р. 2010 г. Анализ PFGE и аэробная и микроаэрофильная выживаемость Bifidobacterium longum subsp. longum изолированный из фекалий человеческих пар мать-дитя. Чонаи Сайкингаку Дзасси 24: 293–302 (На японском). [Google Scholar] 23.Альбешарат Р., Эрманн М.А., Коракли М., Язаджи С., Фогель РФ. 2011 г. Фенотипический и генотипический анализ молочнокислых бактерий в местных ферментированных продуктах питания, грудном молоке и фекалиях матерей и их детей. младенцы. Syst Appl Microbiol 34: 148–155. [PubMed] [Google Scholar] 24. Мацумия Й, Като Н., Ватанабэ К., Като Х. 2002 г. Молекулярно-эпидемиологическое исследование вертикальной передачи вагинальных видов Lactobacillus от матери новорожденному на японском языке — с помощью произвольно затравленной полимеразной цепной реакции.J Infect Chemother 8: 43–49. [PubMed] [Google Scholar] 25. Такахаши Х., Миками К., Нишино Р., Мацуока Т., Кимура М., Кога Ю. 2010 г. Сравнительный анализ свойств изолятов бифидобактерий из фекалий пар мать-младенец. J Педиатр Гастроэнтерол Нутр 51: 653–660. [PubMed] [Google Scholar] 26. Rabouam C, Comes AM, Bretagnolle V, Humbert JF, Periquet G, Bigot Y. 1999 г. Характеристики фрагментов ДНК, полученных методом случайной амплификации полиморфной ДНК (RAPD). Мол Экол 8: 493–503. [PubMed] [Google Scholar] 27.Каррисо Х.А., Пинто Ф.Р., Симас С., Нуньес С., Соуза Н.Г., Фразао Н., де Ленкаср Х., Алмейда Х. 2005 г. Оценка коэффициентов сходства на основе полос для автоматической классификации типов и подтипов микробных изолятов, анализируемых гель-электрофорез в импульсном поле. J Clin Microbiol 43: 5483–5490. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 28. Ventura M, Canchaya C, Del Casale A, Dellaglio F, Neviani E, Fitzgerald GF, van Sinderen D. 2006 г. Анализ эволюции бифидобактерий с использованием мультилокусного подхода.Int J Syst Evol Microbiol 56: 2783–2792. [PubMed] [Google Scholar] 29. Delétoile A, Passet V, Aires J, Chambaud I, Butel MJ, Smokvina T, Brisse S. 2010 г. Разграничение видов и клональное разнообразие четырех видов Bifidobacterium , выявленных методом multilocus последовательность действий. Res Microbiol 161: 82–90. [PubMed] [Google Scholar] 30. Биазуччи Дж., Бененати Б., Морелли Л., Бесси Э., Бем Дж. 2008 г. Кесарево сечение может повлиять на раннее биоразнообразие кишечных бактерий. J Nutr 138: 1796–1800 гг. [PubMed] [Google Scholar] 31.Села Д.А., Миллс Д.А. 2010 г. Уход за нашей микробиотой: молекулярные связи между бифидобактериями и олигосахаридами молока. Тенденции Microbiol 18: 298–307. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 32. Живкович AM, Герман JB, Lebrilla CB, Mills DA. 2011 г. Гликобиом грудного молока и его влияние на микробиоту желудочно-кишечного тракта младенцев. Proc Natl Acad Sci USA 108Suppl 1: 4653–4658. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 33. Асакума С., Хатакеяма Е., Урасима Т., Ёсида Е., Катаяма Т., Ямамото К., Кумагаи Х., Ашида Х., Хиросе Дж., Китаока М.2011 г. Физиология потребления олигосахаридов грудного молока младенческими кишечными бифидобактериями. J Biol Chem 286: 34583–34592. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 34. Locascio RG, Niñonuevo MR, Kronewitter SR, Freeman SL, German JB, Lebrilla CB, Mills DA. 2009 г. Универсальная и масштабируемая стратегия гликопрофилирования бифидобактериями олигосахаридов грудного молока. Microb Biotechnol 2: 333–342. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 35. Сяо Дж.З., Такахаши С., Нисимото М., Одамаки Т., Яешима Т., Ивацуки К., Китаока М.2010 г. Распределение in vitro ферментационная способность лакто- N -биозы I, основного строительного блока грудного молока олигосахариды в штаммах бифидобактерий. Appl Environ Microbiol 76: 54–59. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 36. Мицуока Т., Канеучи К. 1977 г. Экология бифидобактерий. Am J Clin Nutr 30: 1799–1810 гг. [PubMed] [Google Scholar] 37. Фриклунд Б., Туллус К., Берглунд Б., Бурман Л.Г. 1992 г. Важность окружающей среды и фекальной флоры младенцев, медперсонала и родителей как источников колонизации грамотрицательных бактерий новорожденные в трех неонатальных палатах.Инфекция 20: 253–257. [PubMed] [Google Scholar] 38. Муроно К., Фудзита К., Йошикава М., Сайджо М., Иньяку Ф., Какехаши Х., Цукамото Т. 1993 г. Приобретение нематериальных бактерий Enterobacteriaceae младенцами, родившимися в больницах. J Педиатр 122: 120–125. [PubMed] [Google Scholar] 39. Маккартни А.Л., Вэньчжи В., Тэннок Г.В. 1996 г. Молекулярный анализ состава бифидобактериальной и лактобактериальной микрофлоры человека. Appl Environ Microbiol 62: 4608–4613. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 40.Одамаки Т., Боттачини Ф., Като К., Мицуяма Э., Ёсида К., Хоригоме А., Сяо Дж. З., ван Синдерен Д. 2018. Геномное разнообразие и распространение Bifidobacterium longum subsp. longum через человека срок жизни. Sci Rep 8: 85 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 41. Перес П.Ф., Доре Дж., Леклерк М., Левенес Ф., Беньякуб Дж., Серрант П., Сегура-Роггеро И., Шиффрин Э.Дж., Доннет-Хьюз А. 2007 г. Бактериальный импринтинг иммунной системы новорожденных: уроки материнских клеток? Педиатрия 119: e724 – e732.[PubMed] [Google Scholar] 42. Мартин Р., Ланга С., Ревириего С., Хименес Э., Марин М.Л., Оливарес М., Боза Дж., Хименес Дж., Фернандес Л., Хаус Дж., Родригес Дж. М.. 2004 г. Комменсальная микрофлора грудного молока: новые перспективы пищевой бактериотерапии и пробиотиков. Тенденции Food Sci Technol 15: 121–127. [Google Scholar] 43. Йост Т., Лакруа С., Брэггер С., Шассар К. 2013. Оценка бактериального разнообразия в грудном молоке с использованием культурально-зависимого и независимого от культуры подходов. Br J Нутрь 110: 1253–1262. [PubMed] [Google Scholar] 44.Мартин В., Мальдонадо-Барраган А., Молес Л., Родригес-Баньос М., Кампо Р. Д., Фернандес Л., Родригес Д. М., Хименес Э. 2012 г. Распространение бактериальных штаммов между грудным молоком и младенческими фекалиями. J Hum Lact 28: 36–44. [PubMed] [Google Scholar] 45. Йост Т., Лакруа С., Брэггер С.П., Роша Ф., Шассар К. 2014 г. Вертикальный перенос кишечных бактерий от матери к новорожденному при грудном вскармливании. Environ Microbiol 16: 2891–2904. [PubMed] [Google Scholar] 46. Солис Дж., Де Лос Рейес-Гавилан К. Г., Фернандес Н., Марголлес А., Геймонд М.2010 г. Создание и развитие микробиоты молочнокислых бактерий и бифидобактерий в грудном молоке и кишечнике младенцев. Анаэроб 16: 307–310. [PubMed] [Google Scholar] 47. Рамзи Д.Т., Кент Дж. К., Оуэнс Р. А., Хартманн ЧП. 2004 г. Ультразвуковое исследование выделения молока в груди кормящих женщин. Педиатрия 113: 361–367. [PubMed] [Google Scholar]

Bifidobacterium longum subsp. Infantis EVC001 стабильно восстанавливает микробиом кишечника младенца в течение первого года жизни у младенцев, находящихся на грудном вскармливании.

Цель: Грудное молоко эволюционировало, чтобы способствовать не только росту ребенка, но и формировать микробиом кишечника с помощью сложных олигосахаридов грудного молока (HMOs).Отдельные таксоны, особенно младенческие представители Bifidobacterium, связаны с положительными последствиями для здоровья младенцев, и генетическая адаптация к грудному молоку кажется уникальной среди некоторых из этих кишечных микробов, ассоциированных с младенцами. Цель этого исследования состояла в том, чтобы в долгосрочном плане отслеживать эффекты приема добавок активированных Bifidobacterium longum subsp. Infantis (B. infantis) на микробный состав кишечника у младенцев в течение первого года жизни. Мы предположили, что колонизация B.Infantis значительно сократит популяции бактерий, связанных с дисбактериозом кишечника и негативными последствиями для здоровья, при сохранении грудного вскармливания. Методы: женщины, которые планировали кормить своих детей грудью не менее 3 месяцев, и у которых не было осложнений, которые могли бы помешать кормлению грудью, были включены вместе со своими младенцами в исследование IMPRINT. Участники были частично рандомизированы для получения поддержки лактации и активированного препарата B. infantis EVC001 или только поддержки лактации (n = 34 и 32 на группу, соответственно).Младенцы потребляли препарат в течение 21 дня подряд, начиная с 7-го дня послеродового периода, в пакетиках с индивидуальной суточной дозой и смешивали с приблизительно 5 мл сцеженного грудного молока. Образцы стула брали у младенцев на протяжении всего исследования, в течение первого года жизни. Бактериальную ДНК выделяли из образцов стула и анализировали с помощью количественной ПЦР и секвенирования маркерного гена 16S рРНК. Также были собраны измерения фекальных короткоцепочечных жирных кислот и фекального эндотоксина. Результаты: младенцы, получавшие активированный B.Infantis EVC001 быстро колонизировались в большом количестве одним штаммом микроорганизма (> 1010 КОЕ / г фекалий) из первого образца, взятого после приема добавок в течение первого года жизни, при условии, что диета состояла в основном из грудного молока, а не детской смеси. Колонизация с помощью EVC001 также была связана со снижением относительной численности Enterobacteriaceae и Clostridiaceae с соответствующим значительным снижением фекального эндотоксина. Младенцы, получавшие активированный B. infantis, имели значительно больше лактата, ацетата и, следовательно, всего короткоцепочечных жирных кислот.Разницы в побочных эффектах между группами не было. Заключение. Стабильная колонизация кишечным симбионтом младенца B. infantis возможна у младенцев, находящихся на грудном вскармливании, вне зависимости от того, родились ли они вагинально или путем кесарева сечения. Младенцы быстро колонизировались EVC001 в большом количестве сразу после начала приема добавок. Эта колонизация была стабильной в течение первого года жизни, пока продолжалось грудное вскармливание, была безопасной и хорошо переносимой. Эта колонизация оказала глубокое влияние на биохимию фекалий младенцев и микробиом кишечника.Детская смесь, а не прикорм, была связана с дисбактериозом кишечника у младенцев, получавших добавки, и это согласуется с предыдущими исследованиями.

  • Авторские права © 2018 Американской академии педиатрии

Пробиотики могут помочь в лечении колик у младенцев — ScienceDaily

Пробиотики — или «полезные бактерии» — с переменным успехом использовались для лечения детских колик. В новом исследовании, опубликованном в журнале Alimentary Pharmacology & Therapeutics , исследователи показали, что капли, содержащие определенный пробиотический штамм ( Bifidobacterium animalis subsp.lactis BB-12) сократил продолжительность ежедневного плача более чем на 50% у 80% из 40 младенцев, получавших пробиотик один раз в день в течение 28 дней, что положительно повлияло на продолжительность сна, частоту и консистенцию стула. Это по сравнению с 32,5% из 40 младенцев, получавших плацебо.

Детские колики — очень распространенное желудочно-кишечное заболевание, которым страдают до 25% младенцев в первые 3 месяца жизни, и хотя это доброкачественное заболевание, оно является источником серьезных страданий для младенцев и их семей.Это связано с послеродовой депрессией у матери, преждевременным прекращением грудного вскармливания, чувством вины и разочарования родителей, синдромом сотрясения ребенка, многократными посещениями врача, употреблением наркотиков, сменой смеси и долгосрочными неблагоприятными исходами, такими как аллергия, проблемы с поведением и сном.

Эффект, наблюдаемый в исследовании, был связан с положительной модуляцией микробиома кишечника, с увеличением бактериальной продукции бутирата, короткоцепочечной жирной кислоты, которая способна положительно регулировать время прохождения кишечника, восприятие боли, ось кишечник-мозг и воспаление.

«Наше исследование предоставляет доказательства важной роли кишечной микробиоты как объекта вмешательства против младенческих колик», — сказал старший автор исследования Роберто Берни Канани, доктор медицины, доктор философии Университета Неаполя «Федерико II» в Италии. «Уместно подчеркнуть, что это испытание изучало конкретный хорошо охарактеризованный пробиотический штамм, и что эти результаты не могут быть экстраполированы на другие пробиотические штаммы».

История Источник:

Материалы предоставлены Wiley . Примечание. Содержимое можно редактировать по стилю и длине.

AAP сообщает об использовании пробиотиков и пребиотиков у детей — Практические рекомендации

CARRIE ARMSTRONG

Am Fam Physician. 1 апреля 2011 г .; 83 (7): 849-852.

В последние годы возрос интерес к добавлению пробиотиков и пребиотиков в пищевые продукты для оптимизации микрофлоры кишечника. Однако, как и в случае с антибиотиками, использование этих добавок должно подкрепляться доказательной медициной.Американская академия педиатрии (AAP) недавно провела обзор использования пробиотиков и пребиотиков в медицине, чтобы помочь врачам консультировать родителей по поводу использования этих продуктов в качестве пищевых добавок к продуктам для детей, включая детские смеси.

Младенцы имеют стерильный желудочно-кишечный тракт при рождении, но бактериальная колонизация происходит быстро. Гестационный возраст, способ родоразрешения и диета, по-видимому, оказывают значительное влияние на этот процесс. Считается, что нарушение регуляции защитной системы слизистой оболочки кишечника в раннем возрасте является фактором многих хронических состояний, таких как атопические заболевания (например, атопические заболевания).например, астма, экзема, аллергический ринит) и аутоиммунные заболевания (например, рассеянный склероз, сахарный диабет 1 типа, хронические воспалительные заболевания кишечника). Считается, что из-за их влияния на колонизацию кишечной микрофлоры и иммунную функцию ранняя диета младенца и микробная среда кишечника являются ключевыми факторами его или ее общего состояния здоровья.

Пробиотики

Пробиотики — это добавки, содержащие организмы, изменяющие микрофлору хозяина. Эти организмы обычно представляют собой виды Lactobacillus, Bifidobacterium и Streptococcus.Они способны преобладать и преобладать над потенциальными патогенными микроорганизмами в пищеварительном тракте человека и, как считается, продуцируют побочные продукты метаболизма, которые действуют как иммуномодуляторы.

По состоянию на декабрь 2010 года в США продавалось как минимум две смеси для младенцев, содержащие пробиотики. Один содержал Bifidobacterium lactis, а другой — Lactobacillus rhamnosus GG (LGG). Доказано, что добавление пробиотиков к сухой детской смеси вредно для здоровых доношенных детей.Однако нет никаких доказательств клинической эффективности, и рутинное использование этих формул не рекомендуется. Никакие исследования не сравнивали пользу для здоровья от использования этих смесей и грудного вскармливания.

Пробиотики нельзя давать детям, которые серьезно или хронически больны, до тех пор, пока не будет установлена ​​безопасность этих продуктов. Оптимальная продолжительность приема пробиотиков не известна, как и оптимальная дозировка или вид. Долговременное влияние на микрофлору кишечника у детей также не известно.

ОСТРАЯ ИНФЕКЦИОННАЯ ДИАРЕЯ

Использование пробиотиков на ранних стадиях диареи, вызванной острым вирусным гастроэнтеритом, может сократить ее продолжительность на один день у здоровых младенцев и детей раннего возраста. Это преимущество зависит от штамма; LGG — самый эффективный пробиотик. Однако данные не подтверждают регулярное использование пробиотиков для предотвращения инфекционной диареи, за исключением особых обстоятельств (например, в детских учреждениях). Использование новой пятивалентной ротавирусной вакцины, вероятно, будет более эффективным, чем использование пробиотиков для предотвращения наиболее распространенной формы острой инфекционной диареи у младенцев.

ДИАРЕЯ, СВЯЗАННАЯ С АНТИБИОТИКАМИ

Имеются некоторые данные в поддержку использования пробиотиков для предотвращения диареи, связанной с антибиотиками, но нет доказательств того, что они эффективны для лечения. LGG, B. lactis, Streptococcus thermophilus и Saccharomyces boulardii были наиболее распространенными пробиотиками, используемыми в рандомизированных контролируемых исследованиях (РКИ). РКИ, в которых изучались бы эффекты использования пробиотиков у детей с диареей, связанной с антибиотиками Clostridium difficile, не проводилось.

АТОПИЧЕСКИЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ

Доказано, что кишечная бактериальная флора детей с атопическим заболеванием содержит больше Clostridium и меньше организмов Bifidobacterium, чем у детей без атопического заболевания.По этой причине была выдвинута гипотеза, что введение пробиотиков младенцам с риском атопического заболевания, особенно тем, кто питается смесью, будет полезным. Имеются некоторые данные, подтверждающие профилактическое использование пробиотиков матерями во время беременности и продолжение терапии у матери и ребенка во время кормления грудью, но необходимы дальнейшие исследования. Эффективность использования пробиотиков при лечении экземы не доказана.

НЕКРОТИЗИРУЮЩИЙ ЭНТЕРОКОЛИТ

У недоношенных детей часто наблюдается отсроченное и неправильное приобретение нормальной пищеварительной микрофлоры, возможно, из-за ограниченного энтерального питания и частого приема антибиотиков.Считается, что эти факторы способствуют повышенному риску некротического энтероколита у недоношенных детей. Имеются некоторые данные в поддержку использования пробиотиков у младенцев с очень низкой массой тела при рождении (масса тела при рождении от 1000 до 1500 г [2 фунта, 4 унции до 3 фунтов, 5 унций]). Однако количество и конкретный тип пробиотика определить сложно.

ХРОНИЧЕСКОЕ ВОСПАЛИТЕЛЬНОЕ ЗАБОЛЕВАНИЕ КИШКИ

По оценкам, до 70 процентов детей и взрослых с хроническим воспалительным заболеванием кишечника (т.д., болезнь Крона или хронический язвенный колит) обычно используют дополнительную и альтернативную медицину, включая пробиотики, в качестве дополнительной или заместительной терапии назначенных лекарств. Теоретически пробиотики могут быть полезны при лечении этих состояний. Однако долгосрочная польза от использования пробиотиков для лечения болезни Крона требует дальнейшего изучения и не рекомендуется для детей. Результаты РКИ, в которых пробиотики использовались для лечения хронического язвенного колита, обнадеживают, но требуют дальнейшего подтверждения.

ДРУГИЕ УСЛОВИЯ

Устойчивые или долгосрочные преимущества использования пробиотиков для лечения таких заболеваний, как синдром раздраженного кишечника, запоры и внекишечные инфекции, требуют дальнейшего изучения; В настоящее время не рекомендуется применять детям. Есть некоторые свидетельства того, что пробиотики могут быть полезны при лечении детей с гастритом, вызванным Helicobacter pylori, и младенческими коликами; однако, прежде чем рекомендации могут быть сделаны, необходимы дальнейшие исследования. Эффективность пробиотиков в лечении или профилактике рака не доказана.Существуют проблемы безопасности при использовании пробиотиков у младенцев и детей с ослабленным иммунитетом, хронически ослабленных или серьезно больных и имеющих постоянные медицинские устройства.

Пребиотики

Пребиотики — это добавки, содержащие неперевариваемый ингредиент, обычно в форме олигосахаридов, который избирательно стимулирует благоприятный рост или активность местных пробиотических бактерий. Хотя пребиотики плохо перевариваются, их присутствие в пищеварительном тракте усиливает размножение пробиотических бактерий в толстой кишке, особенно видов Bifidobacterium.

Грудное молоко содержит значительное количество пребиотиков и предпочтительно для младенцев в возрасте до шести месяцев. Добавление олигосахаридов в качестве пребиотиков к детской смеси не является необоснованным, но не имеет доказательств, подтверждающих клиническую эффективность. Неизвестно, рентабельно ли их использование.

Использование пребиотиков для профилактики или лечения заболеваний у детей не было широко протестировано в РКИ, но имеющиеся данные показывают, что могут быть некоторые долгосрочные преимущества для профилактики атопической экземы и распространенных инфекций у здоровых младенцев.Тем не менее, прежде чем давать рекомендации, необходимы подтверждающие исследования, особенно у детей, которым дают частично не гидролизованную смесь.

Неонатальная ротовая жидкость как путь передачи бифидобактерий в кишечник младенца сразу после рождения

Объекты и сбор образцов

Это исследование было одобрено Комитетом по этике Школы здравоохранения и спортивных наук Университета Джунтендо и получило информированное письменное согласие был получен от всех матерей.Все эксперименты проводились в соответствии с действующими правилами. В этом исследовании приняли участие пятнадцать здоровых японских пар мать-младенец. Все матери были старше 20 лет, и все новорожденные были доношенными и родились естественным путем. Критерии исключения при приеме на работу включали (1) беременных женщин с метаболическими нарушениями, такими как гестационная гипертензия и гестационный диабет; (2) многоплодная беременность; (3) кесарево сечение в прошлом; (4) использование пероральных противомикробных препаратов в течение 1 месяца после отбора проб; (5) наличие в анамнезе приема лекарств или наличие серьезных заболеваний, требующих приема лекарств; (6) инфекции, такие как гепатит B, ВИЧ и сифилис; и (7) определение непригодности для данного исследования исследователем по другим причинам.Подробная информация представлена ​​в дополнительной таблице 5. Акушерки собирали образцы ОВ путем аспирации из полости рта новорожденных сразу после рождения в родильном зале. Образцы MF были взяты у матерей, испражнявшихся во время родов (ID02, 06, 12 и 13). Образцы OF и MF хранили при 4 ° C в анаэробных условиях до культивирования, которое происходило в течение 6 дней после сбора и обычно проводилось на следующий день после сбора. Образцы IF также собирали примерно через месяц после родов и хранили при -20 ° C.Все образцы были перенесены из больницы в лабораторию Morinaga Milk Industry и хранились при -80 ° C (после культивирования OF) для дальнейшего анализа.

Грудное молоко

BM, используемый для культивирования бактерий, присутствующих в неонатальной OF, был получен из запасов BM в отделении интенсивной терапии новорожденных Университета Джунтендо. BM центрифугировали при 1200 × g в течение 10 минут при 4 ° C для удаления жира, а супернатант дополнительно центрифугировали при 6000 × g в течение 1 часа при 4 ° C для удаления клеток и другого физиологического мусора.Супернатанты из пяти образцов BM объединяли и хранили при -80 ° C до их использования для культивирования.

Культивирование

Образцы новорожденных OF были анаэробно культивированы в объединенных BM или YCFA в течение 48 часов с использованием многоканального ферментера с контролируемым pH (Bio Jr. 8; ABLE, Tokyo, Japan), как описано Satoh et al ., С небольшие модификации 32 . Перед инокуляцией BM или YCFA в сосуде поддерживали при 37 ° C при постоянном перемешивании со скоростью 87 об / мин в анаэробных условиях с доведением pH до 6.5 с NaOH. Затем неонатальный OF инокулировали в BM или YCFA до конечной концентрации 0,1 или 0,2% (об. / Об.), Как показано в дополнительной таблице 1. После начала культивирования pH постоянно контролировали и доводили до pH 5,5 с помощью NaOH, когда pH среды упал ниже 5,5. Культуральный бульон собирали через 16, 24 и 48 ч и центрифугировали при 10000 × g в течение 10 минут при 4 ° C. Супернатант и бактериальный осадок собирали и хранили при -80 ° C до дальнейшей обработки. Никаких изменений pH и общего числа бактериальных клеток не наблюдалось в BM или YCFA, инкубированных без инокуляции.

Профилирование микробиотиков

Профили микробиотиков оценивали путем секвенирования области V3-V4 гена 16S рРНК, как описано ранее 33 . Вкратце, метод взбивания шариков использовали для извлечения ДНК из образцов OF (20 мкл), бактериальных гранул из посткультивированного бульона (1,5 мл) и фекалий (20 мг). Затем ДНК амплифицировали с помощью ПЦР с использованием праймеров Tru357F (5′-CGCTCTTCCGATCTCTGTACGGRAGGCAGCAG-3 ‘) и Tru806R (5′-CGCTCTTCCGATCTGACGGACTACHVGGGTWTCTAAT-3’).Затем адаптеры секвенирования для Illumina MiSeq были впоследствии лигированы с ампликонами, после чего образцы были очищены с использованием набора для очистки QIAquick 96 PCR Purification Kit (Qiagen, Валенсия, Калифорния, США) и затем объединены. Библиотеки секвенировали на платформе Illumina MiSeq с использованием набора реагентов MiSeq v3 Reagent Kit 3 (Illumina Inc., Сан-Диего, Калифорния, США). После удаления последовательностей, согласующихся с данными из сборки 37 человека (GRCh47) Консорциума ссылок на геном, и считываний phiX из необработанных считываний парных концов Illumina, последовательности были проанализированы с использованием QIIME версии 1.8.0. как описано ранее 33 . Потенциальные химерные последовательности длиной менее 150 п.н. со средней оценкой качества менее 25 или последовательности без парных прочтений также удалялись. Таксономическая классификация была выполнена с использованием справочной базы данных Greengenes с 97% -ным порогом полноразмерных последовательностей OTU. Данные на уровне типа и рода показаны в дополнительных таблицах 6 и 7 соответственно. Расстояния UniFrac были рассчитаны с использованием программного обеспечения QIIME.

ПЦР в реальном времени для количественного определения количества клеток

Условия количественной ПЦР в реальном времени (кПЦР) и стандартные штаммы, используемые для количественной оценки, были описаны ранее 34 , а также подробная информация о наборе праймеров, использованном в этом исследовании приведен в дополнительной таблице 8.Образцы ДНК разводили от 1 до 1000 раз для количественной ПЦР. Общее количество бактерий определяли с использованием универсальных праймеров для гена 16S рРНК (Tru357F и Tru806R) и Bifidobacterium longum ssp. longum ( B. longum ) JCM1217 T использовался в качестве стандартного штамма. Кроме того, уровни численности каждого вида Bifidobacterium определяли с использованием B. adolescentis JCM1275 T , B. animalis ssp. lactis JCM1190 T , B.bifidum JCM1255 T , B. breve JCM1192 T , B. dentium JCM1195 T , B. longum JCM1217 T и B. pseudocatenulatum 14 JCM для количественной оценки конкретных видов. B. longum JCM1217 T также использовали для оценки общего количества клеток бифидобактерий. Предел обнаружения (LOD) был определен как менее 10 4 клеток / мл или г, и данные были рассчитаны с использованием LOD / 2 в качестве дополнительного значения 35 .

Выделение штаммов бифидобактерий

Для выделения штаммов бифидобактерий предварительно и посткультивированные образцы OF и IF анаэробно высевали на пропионатный агар TOS (Eiken Chemical, Токио, Япония) или модифицированный агар, в котором источник углерода был изменен с галактоолигосахариды на 2′-фукозиллактозу, D — (+) — целлобиозу или L — (+) — арабинозу с добавлением 50 мг / л мупироцина (Merck KGaA, Дармштадт, Германия) при 37 ° C в течение 48 часов, как описано ранее 36 .Из каждого образца случайным образом выбирали максимум 20 колоний на образец и культивировали в Difco Lactobacilli MRS (Becton Dickinson, NJ, USA) с добавлением 0,05% L -цистеина HCl (Kanto Chemical, Токио, Япония) при 37 ° C. в течение 16 ч в анаэробных условиях. После осаждения бактерий центрифугированием бактерии инкубировали при 37 ° C в течение ночи с буфером для ферментативного лизиса [20 мМ Трис-HCl (pH 8,0), 2 мМ ЭДТА, 0,012% (об. / Об.) Тритон X-100, 20 лизоцим в мг / мл и мутанолизин 500 Ед / мл].Затем суспензию клеток обрабатывали протеазой К и РНКазой, и ДНК бактерий экстрагировали с использованием набора DNeasy Blood & Tissue Kit, как описано ранее 37 . Виды были подтверждены как бифидобактерии с помощью количественной ПЦР с использованием набора праймеров, специфичных для бифидобактерий. Затем каждый изолят бифидобактерий подвергали ПЦР-анализу с произвольной амплификацией полиморфной ДНК (RAPD) для идентификации штамма с использованием праймеров OPF-09 (5′-CCAAGCTTCC-3 ‘) или OPF-11 (5′-TTGGTACCCC-3’).Изоляты из одного и того же образца с одинаковым рисунком RAPD-PCR считались одним и тем же штаммом и подвергались дальнейшему секвенированию геномной ДНК, и подробная информация об изолятах представлена ​​в дополнительных таблицах 2 и 3.

Секвенирование генома и сборка последовательности

Геномную ДНК экстрагировали из субкультивированных штаммов в MRS, как описано выше, и библиотеки получали с использованием набора для подготовки библиотеки ДНК Nextera XT (Illumina Inc.) в соответствии с инструкциями производителя.Парное секвенирование, качественная обрезка и сборка исходных считываний de novo были выполнены с использованием платформы Illumina MiSeq с набором реагентов MiSeq v3 и программным пакетом CLC Genomics Workbench (v 8.0) (Qiagen, Валенсия, Калифорния, США) с настройками по умолчанию, за исключением того, что минимальная длина контига была установлена ​​на уровне 500 бит / с. Контиги, состоящие из менее 100 чтений, были удалены. Предсказание и аннотация открытой рамки считывания (ORF) были выполнены с использованием DDBJ Fast Annotation and Submission Tool (DFAST) с настройками по умолчанию 38 .

Анализ генома

Шесть геномов бифидобактерий ( B. adolescentis ATCC15703, B. bifidum PRL2010, B. breve UCC2003, B. dentium Bd1, B. DSM20438) были взяты из общедоступной базы данных NCBI для сравнительных целей. Сравнение аминокислотных последовательностей проводили с использованием двунаправленного выравнивания BLAST все против всех (отсечка: значение E 0,0001, с идентичностью по меньшей мере 50% по меньшей мере 50% любой последовательности белка) с последующим кластеризацией в семейства белков. с использованием MCL, реализованного в конвейере mclblastline, v12-0678 36 .Изоляты из того же образца в одном кластере MCL были исключены из дальнейшего анализа.

Для штаммов-кандидатов, которые, как ожидается, будут иметь высокое сходство в парах OF и IF согласно результатам кластерного анализа, их геномное сходство оценивалось анализом OrthoANI с онлайн-калькулятором ANI ChunLab (https://www.ezbiocloud.net / tools / ani) 39 900 14. Значение ANI более 99,5% было критерием, используемым для идентификации идентичных штаммов 36 .

Статистический анализ

Общее количество клеток, полученное во время культивирования, анализировали с помощью одностороннего дисперсионного анализа (ANOVA) с последующим тестом Тьюки-Крамера и t -тестом Велча, соответственно, с использованием SPSS Statistics версии 22.0 (IBM Corp., Армонк, штат Нью-Йорк, США) с уровнем значимости, определенным при p <0,05.

B. infantis уменьшает воспаление кишечника у младенцев

В недавнем исследовании, опубликованном в Pediatric Research , исследователи продемонстрировали, что колонизация младенцев определенным штаммом пробиотических бактерий —B.infantis EVC001 — уменьшает воспаление кишечника до 55 раз по сравнению с младенцами, получающими только грудное молоко.

Марк Андервуд, профессор педиатрии и заведующий неонатологией Детской больницы Калифорнийского университета в Дэвисе

Предыдущие исследования показали, что Bifidobacterium longum infantis (B. infantis), штамм бактерий, естественным образом обитающих в кишечнике младенцев, почти уничтожен у младенцев, рожденных в промышленно развитых странах. Это резкое снижение B.Infantis, как полагают, является следствием современных практик здравоохранения, таких как увеличение использования антибиотиков, искусственное вскармливание и кесарево сечение.

Исследователи предполагают, что недостаток B. infantis в кишечнике может быть причиной недавнего роста аутоиммунных заболеваний.

«Если отсутствие B. infantis сыграло роль в росте числа заболеваний, связанных с воспалением, повторное введение его в раннем возрасте могло бы значительно снизить частоту возникновения некоторых из этих состояний», — сказал Марк Андервуд, соавтор исследования, и профессор педиатрии и заведующий неонатологией детской больницы Калифорнийского университета в Дэвисе.

B. infantis и воспаление кишечника

В ходе исследования было изучено 37 семейств бактерий, обычно встречающихся в кишечнике младенцев, включая семейства, содержащие штаммы бактерий, продаваемые в качестве пищевых добавок. Bifidobacteriaceae были единственным семейством кишечных бактерий, которое, как было обнаружено, коррелировало со значительным снижением ключевых маркеров воспаления.

Медицинские работники ищут признаки воспаления кишечника, измеряя ключевые маркеры, такие как цитокины, кальпротектин и эндотоксин.Исследование показало, что младенцы, получавшие B. infantis EVC001, вырабатывали значительно более низкие уровни этих трех маркеров по сравнению с младенцами в контрольной группе.

Младенцы, колонизированные B. infantis EVC001, показали значительное снижение провоспалительных цитокинов — пептидов, связанных с повышенной кишечной проницаемостью, состоянием, которое может влиять на развитие диабета 1 типа.

Младенцы с низким содержанием Bifidobacterium показали уровни калпротектина — белка, выделяемого во время воспаления кишечника — аналогично тем, которые, как было показано, вызывают вдвое больший риск астмы и атопического дерматита у доношенных детей.У младенцев с более высоким содержанием Bifidobacterium уровень кальпротектина в кале был ниже.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *